本實用新型涉及細胞培養箱領域，尤其涉及的是一種新型原代細胞培養箱。背景技術：現有技術中，原代培養，是指由體內取出組織或細胞進行的培養，也叫初代培養。原代培養離體時間短，遺傳性狀和體內細胞相似，適于做細胞形態、功能和分化等研究。較為嚴格地說是指成功傳代之前的培養，此時的細胞保持原有細胞的基本性質，如果是正常細胞，仍然保留二倍體數。但實際上，通常把代至第十代以內的培養細胞統稱為原代細胞培養。利用原代培養，可對細胞培養進行藥物的篩選，根據細胞對加入的化療藥物的敏感性來幫助選擇的化療方案，有可能起到增強療效、降低副作用的作用。而實驗室在進行原代細胞培養過程中，為得到更多的細胞進行篩查，往往需要同時對大量的細胞進行培養，而市面上單層或雙層設計的細胞培養箱已難以滿足實驗者的需求，另外市面上也有一些原代細胞培養箱，但其儲藏空間設計不合理，空間利用率低，在存放大量的細胞培養皿時，其占地面積也大，不方便實驗者存放。同時，無毒和無菌是體外培養細胞的首要條件，培養皿作為用于細胞培養的主要實驗室器皿，常存儲于細胞培養箱內進行貯藏培養，市場上的大型原代細胞培養箱由于空間設計過大。人臍靜脈血管平滑肌細胞分離自臍帶組織，是臍靜脈的重要結構之一。江蘇模式原代細胞實驗

展開全部原代2113細胞和傳代細胞培養有含義5261、培養過程、培養結果和應用四個方面4102區別：16531、含義不同原代培養是直接從生物體獲取組織或的一部分進行培養，也稱初代培養。原代培養是將培養物放置在體外生長環境中持續培養，中途不分割培養物的培養過程。有幾方面含義：原代培養中的代并非細胞的代數，因為培養過程中細胞經多次分裂已經產生多代子細胞。傳代培養是指需要將培養物分割成小的部分，重新接種到另外的培養器皿（瓶）內，再進行培養的過程。2、培養過程不同原代培養的基本過程包括取材、培養材料的制備、接種、加培養液、置培養條件下培養等步驟，在所有的操作過程中，都必須保持培養物及生長環境的無菌。傳代培養時要注意無菌操作并防止細胞之間的交叉污染。所有操作要盡量靠近酒精燈火焰。每次只進行一種細胞的操作。取出長成單層的原代培養細胞，倒掉瓶內培養液，加入消化液。細胞變圓，相互之間不再連片時將消化液倒掉，加入新鮮培養液，吹打，制成細胞懸液。3、培養結果不同原代培養細胞會分裂。原代培養的細胞一般傳至10代左右就不容易傳下去了，細胞的生長就會出現停滯，大部分細胞衰老死亡。細胞接種后一般幾小時內就能貼壁，并開始生長。內蒙古原代細胞實驗重組病毒以其高效和多樣性，是非常有效的將外源基因導入細胞的方法。

觀察的內容包括細胞是否生長良好，形態是否正常，有無污染，培養基的PH是否太酸或太堿（由酚紅指示劑指示），此外對培養溫度和CO2濃度也要定時檢查。一般原代培養進入培養后有一段潛伏期（數小時到數十天不等），在潛伏期細胞一般不分裂，但可貼壁和游走。過了潛伏期后細胞進入旺盛的分裂生長期。細胞長滿瓶底后要進行傳代培養，將一瓶中的細胞消化懸浮后分至兩到三瓶繼續培養。每傳代一次稱為“一代”。二倍體細胞一般只能傳幾十代，而轉化細胞系或細胞株則可無限地傳代下去。轉化細胞可能具有惡性性質，也可能不死性（Immortality）而無惡性。培養正在生長中的細胞是進行各種生物醫學實驗的良好材料。四、凍存及復蘇為了保存細胞，特別是不易獲得的突變型細胞或細胞株，要將細胞凍存。凍存的溫度一般用液氮的溫度—－196℃，將細胞收集至凍存管中加入含保護劑（一般為二甲亞砜或甘油）的培養基，以一定的冷卻速度凍存，終保存于液氮中。在極低的溫度下，細胞保存的時間幾乎是無限的。復蘇一般采用快融方法，即從液氮中取出凍存管后，立即放入37℃水中，使之在一分鐘內迅速融解。然后將細胞轉入培養器皿中進行培養。

4、凍存的細胞該如何開始培養？(1)將一管細胞從液氮罐中取出，注意保護手和眼睛。(2)將凍存管快速的放入37℃水浴中，輕輕握住并旋轉，直到管內物體完全融化。(3)將凍存管立即從水浴中拿出，擦干，轉入無菌環境。(4)用70％的酒精沖洗凍存管，然后擦去多余酒精。(5)打開蓋子，注意手指不要碰到里面的螺紋（注意，由于凍存管有負壓，開蓋時可能會有少量溢出，這是正常現象）。(6)用多聚賴氨酸（或參照說明書）包被培養瓶。多數細胞推薦的接種密度為每平方厘米5000個細胞。(7)蓋好培養瓶的蓋子，輕輕搖晃培養瓶以使細胞分布均勻。若需要氣體交換可打開蓋子。(8)將培養瓶放入培養箱中（37℃，5%CO2，95%空氣）(9)放入培養箱后第6-16小時更換一次培養基，以去除殘留的二甲基亞楓和未貼壁的細胞。5、細胞培養過程中，多久更換一次培養基？這取決于細胞生長的速度。一般而言2-3天更換一次培養基，許多細胞培養實驗室通常在周一，周三，周五更換培養基。注意：凍存細胞復蘇后，在6-16小時內更換培養基，以去除殘留的二甲基亞楓和死亡的細胞。6、我能擴增培養和再次凍存原代正常人類細胞嗎？這取決于細胞的類型。一些細胞類型像神經細胞，神經膠質細胞和一些生長緩慢的上皮細胞。轉染的目的是產生重組蛋白，或特異性增強或控制轉染細胞中的基因表達。

原代細胞的優勢與不足細胞培養很好的補充了體內實驗的不足，它讓細胞功能和進程的研究更具可操作性。細胞系的一個缺點是它們往往與原始的組織有不一樣的遺傳和表型。相比之下，原代細胞保持了細胞在體內的許多重要標志和功能。原代細胞的生長：雖然原代細胞有諸多優點，但是獲得高純度的原代細胞是一個非常艱巨的過程。比起細胞系，原代細胞可謂是極其敏感，需要額外添加經典培養基所沒有的營養。原代細胞要在專為每種細胞定制的特殊培養液中存活和生長。例如內皮細胞與上皮細胞或神經元營養需求就大為不同。因此需要特殊培養基。傳統細胞培養基靠血清提供生長因子、脂類和其他未知成分供細胞生長。但高血清會導致原代細胞分化或助長成纖維細胞等污染。此外，使用血清還會顧慮費用增高和批次差異等問題。使用低血清或無血清的特殊成分培養基不僅可以避開這些問題，還能更好的促進原代細胞的生長。另外，將原代細胞接種在生理親和性的基板上可以顯著提高細胞貼壁率、生長狀態和純度。基因表達分析：基因表達直接影響細胞功能，基因表達分析對研究原代細胞起重要作用。傳統的報告基因檢測和cDNA芯片方法往往需要轉染或大量高質量RNA。但是原代細胞是出了名的難轉染。收到復蘇好的貼壁細胞的處理方法。寧夏大鼠原代細胞實驗室

人臍靜脈內皮細胞分離自臍帶靜脈，一般用于生理學和藥理學研究。江蘇模式原代細胞實驗

換液時間隔一般較短。原代細胞培養問題解答1、原代細胞與細胞系有什么區別？根據傳統定義，自組織收獲和接種的細胞被稱為原代細胞[Freshney,.(1987)..(NewYork,.)].這類細胞直接從組織分離，生命周期有限，經數次傳代后會逐漸停止生長。原代細胞在有限的生命周期內需掌握好細胞的生長空間，以保持細胞群中基因型和表型的一致性。細胞系是不斷生長、分化的細胞群，因其經過遺傳改造，致使其具有無限增長的潛能。體外生長的細胞系用于醫療或科研。但實際上，經過長時間、連續的傳代培養后，細胞系隨著代數的增加，細胞的基因型和表型都有可能發生改變。需要指出的是，在不同的科研小組中這些術語的定義會有所不同。許多研究員不用細胞系這個詞表示細胞群，除非細胞經過了遺傳改造。2、倍增和代數有什么區別？倍增是培養物中細胞總數的翻倍，通常是指細胞指數或對數生長期。代數是指細胞群從培養瓶中移出，傳代培養過程的次數，傳代培養的目的，是使細胞處于低密度以刺激其進一步生長。3、接收到的凍存細胞該如何處理？收到包裝箱后，立即將凍存細胞從干冰移入液氮中凍存。此過程盡量快，以避免升溫。不要將細胞儲存在-80℃，這樣會對細胞造成不可挽回的傷害。江蘇模式原代細胞實驗