細胞凍存概念：細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。而且適度地保存一定量的細胞，可以防止因正在培養的細胞被污染或其他意外事件而使細胞丟種，起到了細胞保種的作用。細胞凍存和復蘇的原則是：慢凍速融，這樣更加有利于保持細胞的活力。凍存細胞不加任何保護劑，會導致細胞內冰晶的產生，從而使細胞產生內源性的機械損傷，引起細胞內環境滲透壓，PH，電解質等的改變，進而促使細胞死亡。無血清快速細胞凍存液：減少各類病毒、霉菌和支原體等的污染，確保凍存細胞安全。太原正規無血清細胞凍存液廠家推薦

細胞凍存中的注意事項：細胞凍存開始時，要溫好相應的培養基和相應的試劑，以及計數耗材，避免操作過程中手忙腳亂。用移液管吹打相應的胞液時，要保證移液管在液面以下吹打，管內要有液體，防止產生相應的氣泡，氣泡的張力會影響細胞的活率和生存狀態。計數細胞時要保證取胞液時也要混勻，這個過程比較重要，細胞不混勻，計數不準，此外吹打應該輕柔，避免細胞在吹打的過程中出現了相應的死亡。凍存離心用50ml離心管比較好，加凍存液吹打混勻比較方便，離心后不能過多地晃動離心管。當離心管液體較多的時候，可以直接傾倒，不要磕，多余的液體較好用泵吸出比較好。凍存支數少的情況，用泵頭輕柔吹打，避免出現氣泡，凍存支數多用移液管吹打。深圳正規無血清細胞凍存液廠家從冰箱里取出細胞冷凍保存管，立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：1、凍存液比例一般是培養基：血清：DMSO=7:2:1或5:4:1；動物種屬的原代細胞凍存液可采用的比例是培養基：血清：DMSO=0:9:1，即直接用血清重懸細胞再加入DMSO，盡管如此，原代細胞的復蘇成活率還是很低。2、有文獻表明，細胞以l℃/min的速度冷凍存活率較髙，因為這一速度可以很好的控制細胞內部晶體的產生。我們實際操作不可能將速度控制的這么精確，目前慣用的就是4℃30min、-20℃1h30min、-80℃2h后轉入液氮中。

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：1、液氮內的細胞凍存較長時間不要超過半年，凍存在液氮中的細胞應一段時間內進行更替。一個細胞系在培養一個月后，可復蘇一管新的細胞確保其質量沒有發生太大變化，傳代幾次后，再凍存留種。2、細胞復蘇時，為保證獲得較高的存活率和接種率，應盡可能的快速完成復蘇，以避免在升溫過程中細胞內部晶體的產生。書面介紹的復蘇溫度是37℃-42℃，但是本人在實際操作中發現40℃環境下復蘇效果較好。3.復蘇時使用的培養基和凍存時使用的培養基中的血清盡量保證同一批次。快速凍存簡化了凍存步驟，同時不需要使用梯度凍存盒。

無血清細胞凍存液：凍存注意：開蓋之前，用70%的乙醇或異丙醇擦拭瓶身。以下說明適用于在6孔板內的培養物的凍存。培養物應該在適合傳代的時候進行收集和凍存。每管所含有的細胞應當來源于6孔板的1個培養孔。如果使用其他的培養器皿，請相應的調整體積。1.在室溫（15-25°C）以300xg離心5分鐘。2.輕輕吸走上清液，注意不要擾動細胞團。3.用血清學吸管以1mL的TBD-698重懸細胞。在打散細胞團時，盡量減少細胞聚集體分解。4.用2mL的血清學吸管將1mL的細胞聚集體轉移到標記好的凍存管中。5.用以下方法凍存細胞聚集體:推薦使用緩速降溫方法，每分鐘降低1度，隨后可以在-196°C液氮長期保存。不推薦在-80°C長期保存。逐步降溫法：-20°C保存2個小時，然后-80°C中保存2個小時，隨后可以在-196°C液氮中長期保存。根據密度調整細胞凍存 液用量。昆明正規無血清細胞凍存液產品介紹

凍存要求發生改變，因為凍存細胞要進行臨床應用。太原正規無血清細胞凍存液廠家推薦

細胞凍存液的操作步驟：1.配置含10%DMSO或凡士林、10～20%小牛血清的凍存細胞培養液;2.取對數成長期的體細胞，除去舊細胞培養液，用PBS清理。3.除去PBS，添加適量蛋白酶(遮蓋細胞培養皿表層)把單面生長發育的體細胞消化吸收出來;4.抽濾1000rpm，5min;5.除去蛋白酶，添加適量配置好的凍存細胞培養液，用塑料吸管輕輕地吹打使體細胞勻稱，記數，調整凍存液中體細胞的較后相對密度為5牙周106/ml～1牙周107/ml;6.將體細胞分裝進凍存管中，每管1～1.5ml;7.在凍存管上標出體細胞的名字，凍存時間及作業者;8.凍存：標準的凍存程序流程為減溫速度-1～-2℃/min;當溫度達-25℃下列時，可升至-5℃～-10℃/min;到-100℃時，則可快速滲入液態氮中。太原正規無血清細胞凍存液廠家推薦