瞬時轉(zhuǎn)染和轉(zhuǎn)染效率的監(jiān)測：基因的瞬時表達(dá)在24-72小時內(nèi)就結(jié)束了。這種快速的瞬時表達(dá)非常適用于驗證質(zhì)粒表達(dá)和監(jiān)測轉(zhuǎn)染步驟的效率。可以使用報告基因來確定優(yōu)化條件，其表達(dá)蛋白易檢測，在目的細(xì)胞中不含此蛋白或水平很低。常用的報告基因包括氯霉素乙酰轉(zhuǎn)移酶（CAT），綠色熒光蛋白（GFP），熒光素酶（Lux或Luc）以及b-半乳糖苷酶（b-gal）。可以使用簡單的非同位素方法檢測b-gal的表達(dá)以測定轉(zhuǎn)染效率和活性。pCMVSPORT-bgal質(zhì)粒包含CMV啟動子調(diào)控下的LacZ基因，轉(zhuǎn)染入真核細(xì)胞內(nèi)后可以直接表達(dá)bgal。結(jié)合簡單的檢測步驟，可以做為監(jiān)測轉(zhuǎn)染條件的一種方便靈敏的方法。一類是瞬時轉(zhuǎn)染，一類是穩(wěn)定轉(zhuǎn)染（很長轉(zhuǎn)染）。貴陽細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價

細(xì)胞轉(zhuǎn)染的注意事項：細(xì)胞狀態(tài)這點非常重要，不要急于求成，一定要讓細(xì)胞處于較佳的生長狀態(tài)再做。有文獻(xiàn)說傳代不要超過17代。細(xì)胞復(fù)蘇后的3代左右時細(xì)胞狀態(tài)較好，不要用傳了很多代的細(xì)胞去做，細(xì)胞的形態(tài)都會發(fā)生變化。大多數(shù)已建立的細(xì)胞系都是非整倍體，原代培養(yǎng)包括了表達(dá)不同基因組合的細(xì)胞的混合物。細(xì)胞培養(yǎng)在實驗室中保存數(shù)月和數(shù)年后會經(jīng)歷突變，總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化。這會導(dǎo)致和轉(zhuǎn)染相關(guān)的細(xì)胞行為的變化。如果隨時間發(fā)現(xiàn)這種變化，融化一管新鮮的細(xì)胞可能會恢復(fù)原先的轉(zhuǎn)染活性。因此，如果觀察到轉(zhuǎn)染效率降低，可以試著轉(zhuǎn)染新鮮培養(yǎng)的細(xì)胞以恢復(fù)較佳結(jié)果。或者，幾種來源于經(jīng)篩選，轉(zhuǎn)染效率較高細(xì)胞亞系的細(xì)胞系現(xiàn)在有售~金華細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑供應(yīng)商對于真核生物，轉(zhuǎn)染就是原核生物中轉(zhuǎn)化的同義詞。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染實驗簡介：實驗原理外源基因進(jìn)入細(xì)胞主要有四種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質(zhì)體介導(dǎo)法和細(xì)菌介導(dǎo)法。電擊法是在細(xì)胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質(zhì)粒進(jìn)入;磷酸鈣法和脂質(zhì)體法是利用不同的載體物質(zhì)攜帶質(zhì)粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進(jìn)入細(xì)胞;細(xì)菌法是利用包裝了外源基因的細(xì)菌傳染細(xì)胞的方法使得其進(jìn)入細(xì)胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實驗條件控制較嚴(yán)、難度較大;細(xì)菌法的前期準(zhǔn)備較復(fù)雜、而且可能對于細(xì)胞有較大影響;所以現(xiàn)在對于很多普通細(xì)胞系，一般的瞬時轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法

細(xì)胞轉(zhuǎn)染實驗注意事項：1.培養(yǎng)基中的物品物品是影響轉(zhuǎn)染的培養(yǎng)基添加物。這些物品一般對于真核細(xì)胞無毒，但陽離子脂質(zhì)體試劑增加了細(xì)胞的通透性，使物品可以進(jìn)入細(xì)胞。這降低了細(xì)胞的活性，導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率降低。這時候可以選擇Entranster轉(zhuǎn)染試劑，非脂質(zhì)體試劑，培養(yǎng)基可加物品，避免了細(xì)胞染菌。2.設(shè)置陽性對照和陰性對照。3.一般在轉(zhuǎn)染24-48h，靶基因即在細(xì)胞內(nèi)表達(dá)。根據(jù)不同的實驗?zāi)康模?4-48h后即可進(jìn)行靶基因表達(dá)的檢測實驗。4.如若建立穩(wěn)定的細(xì)胞系，則可對靶細(xì)胞進(jìn)行篩選，根據(jù)不同基因載體中所含有的抗性標(biāo)志選用相應(yīng)的藥物，常用的真核表達(dá)基因載體的標(biāo)志物有潮霉素和新霉素等。可以使用一些營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基，或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清。

細(xì)胞轉(zhuǎn)染那些事兒：1.設(shè)置陰性和陽性對照：一般在轉(zhuǎn)染后24-48h,靶基因即在細(xì)胞內(nèi)表達(dá)。可依據(jù)不同的實驗?zāi)康模?4-48h后即可進(jìn)行靶基因表達(dá)的檢測等實驗。2.轉(zhuǎn)染后效率的檢測方法：觀察轉(zhuǎn)染后細(xì)胞熒光情況；qPCR驗證；WB檢測敲減或過表達(dá)蛋白。3.轉(zhuǎn)染效率低，可采取以下兩種方法：1)復(fù)轉(zhuǎn)染，即轉(zhuǎn)染后12-24h再進(jìn)行轉(zhuǎn)染，前提是該細(xì)胞對脂質(zhì)體的耐受性較好，轉(zhuǎn)染后細(xì)胞死亡數(shù)較少。2)通過藥篩來殺死未轉(zhuǎn)入成功的細(xì)胞，前提是該質(zhì)粒帶有物品抗性的基因。4.電轉(zhuǎn)時，不同的細(xì)胞需要的電壓是不一樣的，需要做預(yù)實驗，摸索較佳條件。對于大多數(shù)細(xì)胞而言，較佳電壓位于250-1250v/cm。電擊后，應(yīng)該將DNA和細(xì)胞混合液在室溫下放置10min,使細(xì)胞恢復(fù)損傷。來指示細(xì)胞中目標(biāo)基因是否存在，這樣的報告基因一般可以在轉(zhuǎn)染后一兩天內(nèi)檢測到。貴陽細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑

建議選擇50%~80%區(qū)間密度進(jìn)行細(xì)胞轉(zhuǎn)染。貴陽細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價

細(xì)胞轉(zhuǎn)染的注意事項：血清A、DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物形成時不能含血清，因為血清會影響復(fù)合物的形成。B、一般細(xì)胞對無血清培養(yǎng)可以耐受幾個小時沒問題，轉(zhuǎn)染用的培養(yǎng)液可以含血清也可以不加，但血清一度曾被認(rèn)為會降低轉(zhuǎn)染效率，轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進(jìn)行優(yōu)化。C、對于對血清缺乏比較敏感的細(xì)胞，可以使用營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基，或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清。對血清缺乏比較敏感的貼壁細(xì)胞，建議使用**轉(zhuǎn)染試劑。有條件的話，可以用無血清培養(yǎng)基代替PBS洗細(xì)胞兩遍，注意洗的時候要輕，靠邊緣緩緩加入液體，然后不要吹吸細(xì)胞而是轉(zhuǎn)動培養(yǎng)板讓液體滾動在細(xì)胞表面。如果洗的太厲害，細(xì)胞又損失一部分，加了脂質(zhì)體后，細(xì)胞受影響就更大了，死亡細(xì)胞會增多貴陽細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價