目前，主流的RNA提取方法有Trizol法、離心柱法和磁珠法。其中，Trizol法與離心柱法相比，提取效果相當(dāng)，但因其對(duì)操作者帶來的毒性，現(xiàn)在越來越被棄用。磁珠法可以針對(duì)大批量樣本處理，適合機(jī)器自動(dòng)化提取，但是提取核酸純度低，提取得率低，且使用成本較高。對(duì)于拭子RNA含量較低的樣本或比較珍貴的樣本或樣本總數(shù)不是很多的實(shí)驗(yàn)室，選擇的拭子RNA提取方法應(yīng)是離心柱法。近來，隨著基因診斷技術(shù)的發(fā)展，從口腔拭子、泌尿生殖道拭子、痰液等樣本中進(jìn)行RNA提取的試劑盒的應(yīng)用價(jià)值越來越大，如tumour早期診斷、遺傳病檢測(cè)和病原體傳染核酸檢測(cè)等。拭子RNA提取效果在很大程度上取決于采樣質(zhì)量、試劑盒性能等，特別是試劑盒的性能較大影響了拭子核酸的基因檢測(cè)和各種研究的開展。Trizol是一種新型總RNA抽提試劑，采用變性劑即內(nèi)含異硫氰酸胍酚和β-巰基乙醇等變性物質(zhì)。開封正規(guī)RNA提取試劑進(jìn)貨價(jià)

酵母RNA的提取方法：濃鹽法。酵母菌外層是厚達(dá)1.2μm的細(xì)胞壁，其化學(xué)成分是葡聚糖（30-40%）和甘露聚糖（30%），此外，脂類8.5-13.5%，蛋白質(zhì)6-8%，還含有幾丁質(zhì)，酵母菌的葡聚糖，分子是為240000道爾頓，是一種分枝聚合物，葡聚糖與甘露糖之間由蛋白質(zhì)維系起來。近10%的甘露聚糖的側(cè)鏈通過磷酸二酯鍵與磷酸邊接，所有這些連接方式都使得酵母提取物首要的也是關(guān)鍵的是如何破壞細(xì)胞壁。破壁方法有自溶破壁、酶法破壁等多種方法，而用高濃度鹽溶液處理，同時(shí)加熱，以改變細(xì)胞的通透性，就可以使核酸從細(xì)胞內(nèi)釋放出來。由于RNA鈉鹽易溶于水,在含鹽的菌體溶液中,RNA有較高的溶解度,這樣,通過控制溫度使蛋白質(zhì)變性沉淀,通過離心將RNA及蛋白質(zhì)和脫核酵母菌體分離,從而達(dá)到提取之目的。其中食鹽起到自溶促進(jìn)劑，以及防腐與脫臭的作用。長(zhǎng)沙正規(guī)RNA提取試劑平均價(jià)格異硫氰酸胍屬于解偶劑，是一類強(qiáng)力的蛋白質(zhì)變性劑，可溶解蛋白質(zhì)。

酵母總RNA快速提取試劑盒(離心柱型)：一、原理簡(jiǎn)介。改進(jìn)的異硫氰酸胍/酚一步法裂解細(xì)胞和滅活RNA酶，然后總RNA在高離序鹽狀態(tài)下選擇性吸附于離心柱內(nèi)硅基質(zhì)膜，再通過一系列快速的漂洗－離心的步驟,去蛋白液和漂洗液將細(xì)胞代謝物、蛋白等雜質(zhì)去除，較后低鹽的RNasefreewater將純凈RNA從硅基質(zhì)膜上洗脫。二、試劑盒特點(diǎn)：1、離心吸附柱內(nèi)硅基質(zhì)膜全部采用進(jìn)口世界有名公司特制吸附膜，柱與柱之間吸附量差異極小，可重復(fù)性好。克服了國(guó)產(chǎn)試劑盒膜質(zhì)量不穩(wěn)定的弊端。2、結(jié)合了異硫氰酸胍/酚一步法試劑穩(wěn)定性好，純度高和離心柱方便快捷的優(yōu)點(diǎn)，不需要異丙醇沉淀和乙醇洗滌過程，RNA可以直接從離心柱上洗脫避免了過度干燥不易溶解問題。3、獨(dú)有的RL裂解液配方，可以有效的消除基因組污染。4、多次漂洗去蛋白過程，提取RNA純度更高。5、有效的去除了無用的5S在總RNA中含量，提高了純度。

RNA提取濃度不高或質(zhì)量不佳原因及解決辦法：1、得率過低：提取樣本過低總量不足或者提取樣本過多裂解不徹底；應(yīng)當(dāng)使用適當(dāng)質(zhì)量的組織或細(xì)胞進(jìn)行提取，樣本前處理一定要做好，裂解應(yīng)充分。2、基因組殘留：Trizol法提取時(shí)，分層后吸取上清時(shí)吸到中間層會(huì)帶來嚴(yán)重的基因組污染；分層吸取時(shí)應(yīng)當(dāng)格外小心，不要吸取到中間層。如果是采用柱式法提取，可選擇含有DNaseI的試劑盒進(jìn)行提取，吸附在膜上的核酸直接用DNaseI進(jìn)行消化，可極大限度的降低DNA殘留。其價(jià)格比進(jìn)口試劑盒要便宜許多，且效果還不錯(cuò)，性價(jià)比還可以。

昆蟲RNA柱式提取試劑盒使用方法：將50～300mg昆蟲組織放入10～15mL塑料離心管中，加入1mL溶液A，然后用勻漿器勻漿5～20秒。勻漿時(shí)會(huì)產(chǎn)生泡沫，但不影響提取效果。也可以使用液氮硯磨法破碎昆蟲組織，硯磨完后加入1mL溶液A。注意：溶解溶液A沉淀。溶液A在4℃放置后可能會(huì)產(chǎn)生沉淀，使用前必須放在65℃水浴使沉淀徹底溶解并充分搖勻后再取用。將勻漿物或硯磨物轉(zhuǎn)移至干凈的1.5mL塑料離心管中(可以不必轉(zhuǎn)移非液體的細(xì)胞碎片)。在離心管中加入0.3mL的溶液B和0.2mL自備氯仿，在振蕩器上振蕩30秒混勻，此時(shí)溶液呈均勻的乳濁狀。振蕩器振蕩時(shí)必須使管底溶液震蕩起來。室溫12000rmp離心3～5分鐘，兩相間將有約5-10毫米厚的細(xì)胞破碎物。將上清液(約0.6mL)轉(zhuǎn)移到另一干凈的1.5mL塑料離心管中，下層有機(jī)相和中間層含有DNA、蛋白質(zhì)和其他雜質(zhì)，避免觸及或吸取。較好留下100μL上清液不取。加入等體積的溶液C，充分顛倒混勻。RNA的堿基配對(duì)規(guī)則基本和DNA相同，不過除了A-U、G-C配對(duì)外，G-U也可以配對(duì)。寧波南昌RNA提取試劑

拭子RNA提取試劑的選擇？離心柱的硅膠膜RNA吸附性能好、裂解液細(xì)胞裂解能力**封正規(guī)RNA提取試劑進(jìn)貨價(jià)

RNA提取試劑TRIpure是基于世界上使用較普遍的異硫氰酸胍/酚法研制而成的總RNA抽提試劑。在破碎和溶解細(xì)胞時(shí)能保持RNA的完整性。無論是人、動(dòng)物、植物還是細(xì)菌組織，該方法對(duì)少量的組織(50-100mg)和細(xì)胞(5×106)以及大量的組織(≥1g)和細(xì)胞(>107)均有較好的分離效果。TRIpure試劑操作上的簡(jiǎn)單性允許同時(shí)處理多個(gè)樣品，所有的操作可以在一小時(shí)內(nèi)完成。TRIpure抽提的總RNA能夠避免DNA和蛋白的污染，故而能夠作RNA印跡分析、斑點(diǎn)雜交、poly(A)+選擇、體外翻譯、RNA酶保護(hù)分析和分子克隆等。和進(jìn)口品牌實(shí)驗(yàn)對(duì)照顯示，公司的產(chǎn)品質(zhì)量已經(jīng)達(dá)到甚至超過了進(jìn)口產(chǎn)品的質(zhì)量~開封正規(guī)RNA提取試劑進(jìn)貨價(jià)