如何高效率實現細胞轉染：陽離子脂質體轉染試劑脂質轉染試劑，以其適用宿主范圍廣，操作簡便，對細胞毒性小，轉染效率高受到研究者們的青睞。脂質體（liposome）是一種人工膜，在水相中形成具有雙分子層結構的球形封閉囊泡。脂質體可以和帶負電荷的核酸結合后重新形成復合物，當復合物接近細胞膜時，通過內吞作用形成內體（endosomes）進入細胞，通過緩沖液的作用以及脂質與內體膜融合，增大內體的內部滲透壓，使內體結構破壞，釋放出核酸。隨后DNA復合物被釋放進入細胞核內。對于普通細胞系，一般的瞬時轉染方法多采用脂質體法。利用脂質體轉染法較重要的就是防止其毒性，因此脂質體與質粒的比例，細胞密度以及轉染的時間長短和培養基中血清的含量都是影響轉染效率的重要因素，通過實驗優化合適的轉染條件對于轉染效率的提高很重要。直到外源基因在細胞分裂過程中因各種因素丟失為止。廈門細胞高效轉染試劑價格

轉染的注意事項：培養基中的物品物品，比如青霉素和鏈霉素，是影響轉染的培養基添加物。這些物品一般對于真核細胞無毒，但陽離子脂質體試劑增加了細胞的通透性，使物品可以進入細胞。這降低了細胞的活性，導致轉染效率低。所以，在轉染培養基中不能使用物品，甚至在準備轉染前進行細胞鋪板時也要避免使用物品。這樣，在轉染前也不必潤洗細胞。對于穩定轉染，不要在選擇性培養基中使用青霉素和鏈霉素，因為這些物品是GENETICIN選擇性物品的競爭性克制劑。另外，為了保證無血清培養基中細胞的健康生長，使用比含血清培養基更少的物品量。大多數已建立的細胞系都是非整倍體，原代培養包括了表達不同基因組合的細胞的混合物。細胞培養在實驗室中保存數月和數年后會經歷突變，總染色體重組或基因調控變化等而演化，這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。如果隨時間發現這種變化，融化一管新鮮的細胞可能會恢復原先的轉染活性。比如，新鮮融化的NIH3T3細胞比傳代8次的細胞表現出更高的轉染效率，融化細胞的進一步傳代并沒有降低轉染效率。因此，如果觀察到轉染效率降低，可以試著轉染新鮮培養的細胞以恢復較佳結果。廈門細胞高效轉染試劑價格瞬時轉染后，可在48h-72h細胞長滿之后，提取細胞蛋白或者RNA。

細胞轉染之PEI轉染法：1.細胞分盤：通過胰酶消化收集細胞，用適當的完全培養基以1×105至4×105細胞/cm2的密度平鋪細胞于35mm培養皿上（根據實驗需要選擇培養皿，使細胞貼壁后所占面積達到培養皿總面積的70－90％）。將細胞置于含5％CO2的37℃溫箱中孵育8-24h，當細胞貼壁完全后即可開始轉染。轉染前2h換液（用1.5ml無血清培養基置換舊的培養基）。注：PEI轉染法對細胞生長有克制作用，在換液前細胞幾乎不生長，所以需要密度比較大時做轉染。2.制備PEI-DNA混合物以35mm組織培養皿用240μl反應總體積為例。先在無菌EP管中加入120μl1×HBS,再加入質粒DNA（總量1-3μg為佳），混勻后加入等體積PEI工作液，充分混勻后室溫靜置20-30min，較后將這240μl的PEI-DNA混合液逐滴加入上述單層細胞的細胞培養基中，輕輕搖動平皿混勻后置于含5％CO2的37℃溫箱孵育。

細胞轉染的原理、操作步驟以及小技巧：脂質體轉染操作步驟：(1)細胞培養：取6cm細胞皿，向每孔中加入2mL含1~2×105個細胞培養液，37℃CO2培養密度至40%~60%，密度過大，轉染后不利篩選細胞。(2)轉染液制備：在EP管中制備以下兩液(為轉染每一個孔細胞所用的量)A液：用不含血清培養基稀釋1ug質粒DNA。B液：用不含血清培養基稀釋2ul脂質體。分別將A液與B液輕彈混勻，靜置5分鐘。(3)吸取B液加入至A液中，輕彈混勻。室溫中置10-15分鐘。(4)轉染準備：用1mL不含血清培養液漂洗兩次，再加入4mL不含血清培養液。(5)轉染：把A/B復合物緩緩加入培養液中，搖勻，37℃溫箱置6~24小時，吸除無血清轉染液，換入正常培養液繼續培養。(6)瞬時轉染后，可在48h-72h細胞長滿之后，提取細胞蛋白或者RNA，驗證敲減/過表達效率。這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。

轉染的注意事項：培養基中的物品物品，比如青霉素和鏈霉素，是影響轉染的培養基添加物。這些物品一般對于真核細胞無毒，但陽離子脂質體試劑增加了細胞的通透性，使物品可以進入細胞。這降低了細胞的活性，導致轉染效率低。所以，在轉染培養基中不能使用物品，甚至在準備轉染前進行細胞鋪板時也要避免使用物品。這樣，在轉染前也不必潤洗細胞。對于穩定轉染，不要在選擇性培養基中使用青霉素和鏈霉素，因為這些物品是GENETICIN選擇性物品的競爭性克制劑。大部分細胞可以在無血清培養基中幾個小時內保持健康。鄭州正規細胞高效轉染試劑哪家便宜

由于脂質體對細胞有一定的毒性，所以轉染時間一般不超過24小時。廈門細胞高效轉染試劑價格

細胞轉染實驗簡介：實驗原理外源基因進入細胞主要有四種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質體介導法和細菌介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質粒進入;磷酸鈣法和脂質體法是利用不同的載體物質攜帶質粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進入細胞;細菌法是利用包裝了外源基因的細菌傳染細胞的方法使得其進入細胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實驗條件控制較嚴、難度較大;細菌法的前期準備較復雜、而且可能對于細胞有較大影響;所以現在對于很多普通細胞系，一般的瞬時轉染方法多采用脂質體法廈門細胞高效轉染試劑價格