凍存細胞復蘇方法：1.從冰箱里取出細胞冷凍保存管，立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2.待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合，再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養基的試管中，混合均勻。3.離心收集培養細胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min），移去上清液。4.清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。5.加入適量的新鮮細胞培養基，使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后，將細胞混合液移至事先準備好的培養瓶中。6.鏡檢后，研究者可根據各自方法和需要來進行細胞培養。加入適量細胞凍存液于離心管中，使細胞濃度為1x106～1x107 cells/mL。蘇州無血清細胞凍存液廠家供應

細胞凍存秘籍：細胞凍存對于大多數動物細胞，通常每分鐘下降-1至-3℃。控制冷卻過程的較好方法是使用程序降溫系統。如果沒有程序降溫系統，可以使用程序降溫盒，然后將其置于-70℃至-90℃冰箱中過夜。雖然這種方法適用于許多細胞系，但不能提供可控的，均勻的或可重復的冷卻，不建議用于珍貴細胞。無論使用哪種冷卻方法，重要的是快速高效地將其傳輸到較終存儲位置。如果轉移不能立即完成，可以將小瓶置于干冰上一段時間。這樣可以避免在轉移過程中發生溫度升高而損害細胞。在這個轉移過程中溫度升高是解凍后影響細胞活力的主要原因。南昌無血清細胞凍存液廠家直銷1000 rmp離心5分鐘，去除離心管中的上清液，收集細胞沉淀。

無血清細胞凍存液復蘇細胞實驗步驟：1.從冰箱里取出細胞冷凍保存管，立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2.待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合，再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養基的試管中，混合均勻。3.離心收集培養細胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min），移去上清液。4.清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。5.加入適量的新鮮細胞培養基，使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后，將細胞混合液移至事先準備好的培養瓶中。

凍存細胞注意事項：冷凍保護劑可降低培養基的冰點，并可減緩冷卻速度，較大降低冰晶形成的危險(冰晶可損傷細胞，導致細胞死亡)。注：DMSO可促進有機分子進入組織。操作含DMSO的試劑時，應采用與此類物質安全危害相適應的設備和操作規范，并應按照當地法規處置此類試劑。建議可使用廠商生產的無血清細胞凍存液，使用方便，復蘇率高。注意冷凍保護劑DMSO的品質：DMSO應為試劑級等級，無菌且無色，以5-10ml小體積分裝，4℃避光保存，勿作多次解凍無血清凍存液使用方法：收集懸浮細胞或貼壁細胞，離心去除上清培養液。

細胞凍存液的操作步驟：1.配置含10%DMSO或凡士林、10～20%小牛血清的凍存細胞培養液;2.取對數成長期的體細胞，除去舊細胞培養液，用PBS清理。3.除去PBS，添加適量蛋白酶(遮蓋細胞培養皿表層)把單面生長發育的體細胞消化吸收出來;4.抽濾1000rpm，5min;5.除去蛋白酶，添加適量配置好的凍存細胞培養液，用塑料吸管輕輕地吹打使體細胞勻稱，記數，調整凍存液中體細胞的較后相對密度為5牙周106/ml～1牙周107/ml;6.將體細胞分裝進凍存管中，每管1～1.5ml;7.在凍存管上標出體細胞的名字，凍存時間及作業者;8.凍存：標準的凍存程序流程為減溫速度-1～-2℃/min;當溫度達-25℃下列時，可升至-5℃～-10℃/min;到-100℃時，則可快速滲入液態氮中。也可將配有體細胞的凍存管放進-20℃電冰箱2h，隨后放進-70℃電冰箱中留宿，取下凍存管，移進液氮容器內。含多種保護劑成分,一些保護劑,易于穿透細胞。蘇州無血清細胞凍存液廠家供應

無血清細胞凍存液產品性能：提高細胞存活率和活力，亦適合于無血清培養細胞和蛋白表達細胞。蘇州無血清細胞凍存液廠家供應

無血清細胞凍存液：1.逐滴加入5-7mL的預熱的培養基到15mL的離心管中，加入的同時輕輕混勻。2.室溫（15-25°C）以300xg離心5分鐘。3.吸出培養基，使細胞沉淀完好無損。使用2mL血清移液管輕輕將細胞沉淀重懸于1mL的培養基中。小心保持細胞作為聚集體。4.將0.5mL的細胞混合物轉移到含有培養基的預包被的6孔板的培養孔中（例如，每個冷凍管可以鋪板兩個孔）。注意：鋪板多少孔可能需要根據凍存的細胞聚集體數量進行調整。通常在復蘇后，要比在常規的傳代鋪板更多的細胞聚集體數量。將培養板放入37°C培養箱。快速前后左右的搖晃培養板數次，將細胞聚集體分布均勻。24小時內不要移動培養板。蘇州無血清細胞凍存液廠家供應