轉(zhuǎn)染方式:細胞由帶負電荷的磷脂雙分子層構(gòu)成,這對大分子物質(zhì)來說是個不可透過的屏障,比如DNA和RNA的磷酸骨架,其也帶負電荷。為了使核酸穿過細胞膜,研究人員開發(fā)了多種技術(shù),大致分為三類:化學(xué)方法---利用載體分子包被核酸使其呈現(xiàn)中性電荷或正電荷。生物方法---利用基因工程細菌轉(zhuǎn)染非細菌基因到細胞中。物理方法---在細胞膜表面產(chǎn)生一個瞬時的孔從而導(dǎo)入DNA。然而,沒有一種方法適用于所有的細胞和實驗,理想的方法應(yīng)根據(jù)您的細胞類型和實驗需要進行選擇,理想的方法應(yīng)具有高轉(zhuǎn)染效率,低細胞毒性和對正常生理學(xué)的影響較小,并且易于使用和可重復(fù)性等特點。對于原代細胞,可用促有絲分裂刺激物進行細胞活化。太原細胞高效轉(zhuǎn)染試劑銷售廠家

細胞轉(zhuǎn)染實驗簡介:實驗原理外源基因進入細胞主要有四種方法:電擊法、磷酸鈣法和脂質(zhì)體介導(dǎo)法和細菌介導(dǎo)法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質(zhì)粒進入;磷酸鈣法和脂質(zhì)體法是利用不同的載體物質(zhì)攜帶質(zhì)粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進入細胞;細菌法是利用包裝了外源基因的細菌傳染細胞的方法使得其進入細胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實驗條件控制較嚴、難度較大;細菌法的前期準備較復(fù)雜、而且可能對于細胞有較大影響;所以現(xiàn)在對于很多普通細胞系,一般的瞬時轉(zhuǎn)染方法多采用脂質(zhì)體法。合肥正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑直銷價形成DNA脂復(fù)合物,也能被表面帶負電的細胞膜吸附。

細胞電轉(zhuǎn)染實驗的幾點建議:1.電場強度要合適合適的電場強度對于電轉(zhuǎn)染實驗非常重要,電場強度不能過高,過高會增加細胞的死亡率;也不能過低,過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細胞系具有不同的較佳場強值,實驗前應(yīng)測定所轉(zhuǎn)染細胞系的較佳電場強度。2.細胞狀態(tài)要好用于電轉(zhuǎn)的細胞一般選取處于對數(shù)生長期的細胞(15代以內(nèi),傳代后2d)。因為處于對數(shù)生長期的細胞分裂旺盛,表面結(jié)構(gòu)致密比穩(wěn)定期的細胞差,電轉(zhuǎn)后,細胞膜的恢復(fù)能力強,而且處于有絲分裂期的細胞更容易接受外源DNA.
細胞轉(zhuǎn)染那些事兒:1.設(shè)置陰性和陽性對照:一般在轉(zhuǎn)染后24-48h,靶基因即在細胞內(nèi)表達。可依據(jù)不同的實驗?zāi)康模?4-48h后即可進行靶基因表達的檢測等實驗。2.轉(zhuǎn)染后效率的檢測方法:觀察轉(zhuǎn)染后細胞熒光情況;qPCR驗證;WB檢測敲減或過表達蛋白。3.轉(zhuǎn)染效率低,可采取以下兩種方法:1)復(fù)轉(zhuǎn)染,即轉(zhuǎn)染后12-24h再進行轉(zhuǎn)染,前提是該細胞對脂質(zhì)體的耐受性較好,轉(zhuǎn)染后細胞死亡數(shù)較少。2)通過藥篩來殺死未轉(zhuǎn)入成功的細胞,前提是該質(zhì)粒帶有物品抗性的基因。4.電轉(zhuǎn)時,不同的細胞需要的電壓是不一樣的,需要做預(yù)實驗,摸索較佳條件。對于大多數(shù)細胞而言,較佳電壓位于250-1250v/cm。電擊后,應(yīng)該將DNA和細胞混合液在室溫下放置10min,使細胞恢復(fù)損傷。直到外源基因在細胞分裂過程中因各種因素丟失為止。

細胞轉(zhuǎn)染操作方法:轉(zhuǎn)染,是將外源性基因?qū)爰毎麅?nèi)的一種專門技術(shù)。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉(zhuǎn)染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉(zhuǎn)染大致可分為物理介導(dǎo)、化學(xué)介導(dǎo)和生物介導(dǎo)三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因?qū)儆谕ㄟ^物理方法將基因?qū)爰毎姆独换瘜W(xué)介導(dǎo)方法很多,如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染方法、和多種陽離子物質(zhì)介導(dǎo)的技術(shù);生物介導(dǎo)方法,有較為原始的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)染,和現(xiàn)在比較多見的各種細菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù)。理想細胞轉(zhuǎn)染方法,應(yīng)該具有轉(zhuǎn)染效率高、細胞毒性小等優(yōu)點。細菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù),是目前轉(zhuǎn)染效率較高的方法,同時具有細胞毒性很低的優(yōu)勢。但是,細菌轉(zhuǎn)染方法的準備程序復(fù)雜,常常對細胞類型有很強的選擇性,在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學(xué)介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染方法,則各有其特點瞬時表達分析所需的人力和時間比穩(wěn)定表達少。深圳正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑推薦廠家
有血清時的轉(zhuǎn)染 血清一度曾被認為會降低轉(zhuǎn)染效率。太原細胞高效轉(zhuǎn)染試劑銷售廠家
細胞轉(zhuǎn)染為什么不能加血清:不同的細胞及轉(zhuǎn)染試劑要求轉(zhuǎn)染的條件是不同的。較好是在靠前次實驗前做一個預(yù)實驗,比如:HeLa,293,CHO,COS7,MCF-7,HepG2等細胞,是否加血清,對不同的細胞是有不同的影響的,有些細胞是可以有血清的,有些加血清就會受影響。轉(zhuǎn)染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基,其一因為普通轉(zhuǎn)染試劑對細胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的細胞的死亡。轉(zhuǎn)染時不加血清是防止血清的干擾作用,轉(zhuǎn)染后可適時加入。加入過早會引起未轉(zhuǎn)染細胞的優(yōu)勢生長,過晚會引起較多細胞死亡。可實時觀察1/5細胞變圓的時候加入血清太原細胞高效轉(zhuǎn)染試劑銷售廠家