糖原及粘液染色法注意事項：1、糖原的固定要及時，而且標本要新鮮。2、如用無水酒精作糖原的固定劑，有它的弊病，因無水酒精滲透較慢，而且容易產生極化，（極化是糖原顆粒趨向于細胞的一端）。故用Gendre氏固定液效果較佳，其配法如下：苦味酸飽和于95%酒精85ml40%甲醛10ml冰醋酸5ml3、各種試劑必須化學純，亞硫酸鈉須有濃厚氣味，器皿必須潔凈而干燥，染色缸亦是。4、如果Schiff氏試劑，在經過活性碳吸附漂白后不顯無色，首先應考慮試劑中的偏重亞硫酸鈉是否失效。如果偏重亞硫酸鈉氣味不濃，使用時可考慮適當的增加用量。其次考慮堿性品紅本身，常常雖屬同一生產廠家，但不同批號，其效果就可能不同，應特別引起注意~過碘酸將血細胞內的糖原氧化，生成醛基。福建品牌糖原染色試劑盒廠家直銷

糖原D-PAS染色液：使用方法：1、兩張相同切片，二甲苯脫蠟，梯度乙醇入水。2、一張切片入37℃淀粉酶溶液處理1h。另一張不用淀粉酶溶液處理，入水中1h作為對照。3、流水沖洗兩張切片各5～10min。4、入過碘酸溶液，室溫放置5～8min，一般不宜超過10min。5、自來水沖洗1次，再用蒸餾水浸洗2次。6、入SchiffReagent，置于室溫陰暗處浸染10～20min。7、自來水沖洗10min。8、入Mayer蘇木素染色液，染細胞核1～2min。9、(可選)酸性乙醇分化液分化2～5s。10、自來水沖洗10～15min，更換蒸餾水清洗使其返藍。11、二甲苯透明，中性樹膠封固。山東如何使用糖原染色試劑盒推薦廠家在滴加染液時，務必使染液完全覆蓋組織，但不能溢出圈外，避免浪費試劑。

網狀纖維染色：網狀纖維是非常細而短的纖維，大量堆積時則形成致密的網狀，故有網狀纖維之稱。疏松組織中網狀纖維比較少，它多分布在結締組織與其它組織交界處，如在上皮組織與結締組織交界處的基膜內，血管周圍以及造血部位，內分泌腺的腺細胞團索和外分泌腺的腺末房周圍等處均有豐富的網狀纖維。網狀纖維的變化，反映了疾病的發生和發展的不同過程，對疾病的診斷有極大意義。網狀纖維的多少、粗細緊密、疏松或斷裂，都是病理檢驗的重要指標，尤其是在臨床病理診斷中，可根據其存在和分布來鑒別與肉瘤。而在HE染色標本上，網狀纖維不易顯色。

糖原染色試劑盒。含乙二醇基的多糖經過碘酸氧化，產生醛基，與雪夫（Schiff）試劑中無色品紅結合，形成紫紅色沉淀物定位于含糖原的胞漿中。該反應稱為碘酸-雪夫（PAS）反應。（1）雪夫液配制：堿性品紅1g溶于200ml沸水中，冷卻60℃時過濾，加1mmol/L鹽酸20ml，再冷卻至25℃左右，加偏重亞硫酸鈉（Na2S2O5）2g，混合后放棕色瓶中，置暗處24h，無色即可放冰箱中保存，呈微紅色，則加活性炭1～2g，吸附過濾使成無色液體，放冰箱中保存。若溶液變紅，即不能再用。（2）10g/L過碘酸水溶液：過碘酸（HIO4·2H2O）1g,加蒸餾水至10ml。溶解后蓋緊放冰箱備用，一般可用3個月，變黃則失效故PAS染色有助于三種急性白血病類型的鑒別。

糖原及粘液染色法：操作方法：（1）石蠟切片脫蠟至水。（2）0.5%過碘酸水溶液5分鐘?；?%過碘酸95%酒精溶液（過碘酸再結晶應重新配制使用）。（3）蒸餾水洗，70%酒精洗。（4）Schiff氏液15-30分鐘。（Schiff氏液從冰箱取出升至室溫使用）（5）流水沖洗10分鐘。（6）蘇木素浸染細胞核2-3分鐘。（7）脫水、透明、封蓋。結果：糖原呈紅色，細胞核呈藍色。試劑配制：（1）0.5%過碘酸（HIO4）水溶液或70%酒精溶液。（2）Schiff氏試劑。堿性品紅1g蒸餾水200ml1N鹽酸（98.3ml比重1.16鹽酸，加入蒸餾水成1000ml）20ml偏重亞硫酸鈉或鉀1g堿性品紅1g加入200ml蒸餾水，攪拌加熱沸騰，待冷卻至50℃過濾，加入當量鹽酸至25℃時加入偏重亞硫酸鈉。置于暗處，兩天后溶液變桔黃色或草黃色，然后加入少量活性碳并震蕩、過濾，此時溶液應為無色。保存冰箱備用。溶液如顯淺紅色或草黃色，染色效果較差~無水酒精滲透較慢，而且容易產生極化。提供糖原染色試劑盒報價

對某種鹽基性人工合成染料如硫堇或甲苯胺藍有異染性。福建品牌糖原染色試劑盒廠家直銷

糖原染色是病理學中常規的染色方法之一，McManus在1946年較先使用高碘酸-雪夫技術顯示黏蛋白，該法常用來顯示糖原和其他多糖，該染色試劑盒不僅能夠顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質和某些酸性物質以及軟骨、垂體、霉菌、色素、淀粉樣物質、基底膜等。過碘酸(又稱高碘酸)是一種強氧化劑，它能氧化糖類及有關物質中的1，2-乙二醇基，使之變為二醛，醛不Schiff試劑能結合成一種品紅化合物，產生紫紅色。由于高碘酸還可氧化細胞內其他物質，使用時應注意選擇好高碘酸濃度和氧化時間，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于過氧化，這是很關鍵的步驟。PAS技術是很少可檢測不同種類的黏液物質(如糖原、黏蛋白和糖蛋白)的方法，但PAS技術卻不能區別黏蛋白和糖原。若要冸確鑒別黏液物質(如黏蛋白或糖原)，需加入糖原消化步驟。大多數情冴下可用α–淀粉酶或麥芽淀粉酶來催化糖原的糖苷鍵水解，形成水溶性的雙糖-麥芽糖，在應用PAS技術之前將糖原從組織切片上除去。人類的唾液被認為是消化糖原的一種有效手段，但是出于安全以及缺乏標冸唾液的考慮，不主張應用唾液福建品牌糖原染色試劑盒廠家直銷