中流細胞分泌的外泌體可以通過體液進入特定qi官，建立有利于ai細胞生長的微環境，包括促進受體細胞上皮細胞-間充質轉化、引發炎癥、促進血管生成，為ai細胞的擴散形成有利條件。進一步研究發現中流細胞外泌體能夠引導ai癥轉移至特定qi官，在膜表面特異性整合素的作用下，中流細胞外泌體首先在特定的qi官累積，引起受體qi官產生炎癥、生成血管，形成有利于中流轉移的微環境，使得中流細胞更容易轉移至該qi官。Maji等揭示了惡性中流細胞外泌體中的AnnexinⅡ蛋白能夠促進血管生成，為中流轉移創造有利的微環境。有望將外泌體應用在各種疾病醫治上。乳液外泌體提取試劑盒應用

血清中的miR-122和miR-145非常不穩定,將血清在4°C短期保存期間即發生降解,這可能是由外泌體的異質性所導致的。–80°C保存被公認是保存各種生物標本如尿、牛奶、血液和支氣管肺泡灌洗液適宜的保存環境,雖然這樣保存血漿可能產生含有大量“污染物”的外泌體。4°C保存雖然容易導致外泌體中蛋白和核酸的損失,但卻能夠避免凍融過程造成的囊泡破壞。外泌體雖然建議保存于-80°C環境下,但在處理或運輸過程中有時很難維持這種低溫條件。CHAROENVIRIYAKUL等提出一種凍干法以保存外泌體,在冷凍過程中使用海藻糖作為保護劑,海藻糖可以提供生物保護作用,如穩定蛋白質、細胞膜和脂質體;減少冷凍過程中冰的形成;防止蛋白質以及外泌體的聚集;減少分離和保存過程中細胞外囊泡的損失等。海洋生物外泌體iTRAQPS親和法提取的外泌體，其蛋白特異性檢測可高出10~100倍以上。

獲得囊泡粒徑分布的兩種方法動態光散射(DLS)和納米顆粒跟蹤分析(NTA)都被廣fan應用于外泌體顆粒數目和粒徑分布的測量，但兩種方法也各有不足。動態光散射法中散射光強度依賴于顆粒質量(體積)，混合體系中大囊泡的存在(即使只有很少的量)將嚴重影響測量結果，因此動態光散射法更適用于單分散體系。而且動態光散射法所得的結果強烈依賴于所應用的數學算法。而采用納米顆粒跟蹤分析儀對不同粒徑范圍的囊泡進行檢測時，為了得到準確的濃度和粒徑信息，需要根據所要測量的顆粒粒徑范圍對儀器分別校準，操作繁瑣。受檢測靈敏度所限，納米顆粒跟蹤分析儀適用于粒徑范圍50nm～1μm的顆粒，粒徑小于50nm的外泌體無法檢測。除此之外，兩種方法都依賴光散射和粒子的布朗運動進行分析，難以區分合成的納米材料、大蛋白質聚合體和生物囊泡。

外泌體基礎醫學和臨床應用的探索和深入研究對如何準確及高純度提取外泌體,并完整保存提出了更高的技術要求。外泌體可通過差速超速離心在不同離心力下沉淀樣品中不同的雜質組分,并在100000×g~200000×g的轉速下獲取較純的外泌體。差速超速離心技術被認為是外泌體分離的“金標準”,也是目前常用的外泌體分離和濃縮方法。該方法可通過結合0.22μm或0.45μm孔徑濾膜進行超濾來提高產物純度減少外泌體的聚集,其分離效率容易受到加速度、轉子類型、旋轉半徑、沉降路徑長度以及樣品黏度等多種因素影響。外泌體在組織修復領域均起著重要的作用，并且可以作為很好靶向給藥系統。

雖然外泌體在疾病的診斷上有天然優勢，但在臨床應用上仍有一些限制：外泌體的提取方法金標準仍然是差速離心法，但這種方法費時費力且提取效率較低，難以進行臨床推廣和應用；而商業化的試劑盒質量參差不齊，往往導致提取物雜質過多，且其售價較高。外泌體的定量是采用顆粒濃度定量，蛋白濃度定量，亦或是核酸濃度定量，目前仍存有爭議。由于傳統的內參并不適用于外泌體，在實時熒光定量PCR檢測靶分子含量時內參的選擇尚沒有統一的標準。外泌體分子標志物的研究還處于初級階段。目前外泌體研究的整個流程中成本都很高。外泌體與各種疾病的相關性被檢測出，特別是血液中釋放的病細胞來源的外泌體。海洋生物外泌體iTRAQ

外泌體可參與到機體免疫應答、抗原提呈、細胞遷移、細胞分化等方方面面。乳液外泌體提取試劑盒應用

外泌體（Exosome）開始被認為是毫無作用的“垃圾”，但隨著研究的不斷深入，人們發現事實并非如此，外泌體（Exosome）是具有功能活性并可進行細胞間信息傳遞的微囊泡。外泌體（Exosome）介導瘤細胞的免疫耐受。瘤細胞來源的外泌體（Exosome）本身可作為瘤抗原，因此，瘤來源的外泌體（Exosome）既是一種抗原呈遞系統，同時也是瘤排斥抗原的來源。瘤來源的外泌體（Exosome）能夠通過傳遞某些抑制信號，在機體免疫應答過程中起負性調節作用，誘導瘤細胞形成免疫耐受，從而逃避免疫細胞的殺傷。乳液外泌體提取試劑盒應用