細胞轉染的常用方法:細菌轉染:原理:對于用脂質體不能實現轉染的細胞,可以采用細菌轉染。可用于蛋白質過表達或克制,是臨床研究中較常用的方法。它通過侵染宿主細胞將外源基因整合到染色體中,可用于難轉染細胞、原代細胞的穩定性轉染。實驗步驟:通過基因克隆生成重組細菌 → 采用非細菌法轉染包裝細胞系,擴增并分離得到重組細菌顆粒→純化并滴定細菌液→轉導目的細胞(含有細菌特異性的受體)→去除培養物中的細菌,并加入新鮮培養基→分析細胞瞬時基因表達或沉默情況。大部分細胞可以在無血清培養基中幾個小時內保持健康。南京正規細胞高效轉染試劑廠家直銷轉染的注意事項:有血清時的轉染 血清一度曾被認為會降低轉染效率,但只要在D...
細胞轉染實驗注意事項:1.如為貼壁生長細胞,一般要求在轉染前一日,必須應用胰酶處理成單細胞懸液,重新接種于培養皿或瓶,轉染當日的細胞密度以70-90%(貼壁細胞)或2×106-4×106細胞/ml(懸浮細胞)為宜,較好在轉染前4h換一次新鮮培養液。2.用于轉染的質粒DNA必須無蛋白質,無RNA和其他化學物質的污染,OD260/280比值應在1.8以上。3.培養基中的血清在開始準備DNA和陽離子脂質體試劑稀釋液時要使用無血清的培養基,因為血清會影響復合物的形成。其實,只要在DNA-陽離子脂質體復合物形成時不含血清,在轉染過程中是可以使用血清的。對大多數細胞而言,均需要在轉染當天或前現在鋪板,第二...
轉染技術:國際上推出了一些陽離子聚合物基因轉染技術,以其適用宿主范圍廣,操作簡便,對細胞毒性小,轉染效率高受到研究者們的青睞。其中樹枝狀聚合物(Dendrimers)和聚乙烯亞胺(Polyethylenimine,PEI)的轉染性能較佳,但樹枝狀聚合物的結構不易于進一步改性,且其合成工藝復雜。聚乙烯亞胺是一種具有較高的陽離子電荷密度的有機大分子,每相隔二個碳個原子,即每“第三個原子都是質子化的氨基氮原子,使得聚合物網絡在任何pH下都能充當有效的“質子海綿”(protonsponge)體。這種聚陽離子能將各種報告基因轉入各種種屬細胞,其效果好于脂質聚酰胺,經進一步的改性后,其轉染性能好于樹枝狀聚...
如何高效率實現細胞轉染:陽離子脂質體轉染試劑脂質轉染試劑,以其適用宿主范圍廣,操作簡便,對細胞毒性小,轉染效率高受到研究者們的青睞。脂質體(liposome)是一種人工膜,在水相中形成具有雙分子層結構的球形封閉囊泡。脂質體可以和帶負電荷的核酸結合后重新形成復合物,當復合物接近細胞膜時,通過內吞作用形成內體(endosomes)進入細胞,通過緩沖液的作用以及脂質與內體膜融合,增大內體的內部滲透壓,使內體結構破壞,釋放出核酸。隨后DNA復合物被釋放進入細胞核內。對于普通細胞系,一般的瞬時轉染方法多采用脂質體法。利用脂質體轉染法較重要的就是防止其毒性,因此脂質體與質粒的比例,細胞密度以及轉染的時間長...
轉染效率:線型PEI(LinePEI,LPEI)與其衍生物用作基因轉染載體的研究比分枝狀PEI(BranchedPEI,BPEI)要早一些,過去的研究認為在不考慮具體條件,LPEI/DNA轉染復合物的細胞毒性較低,有利于細胞定位,因此與BPEI相比應該轉染效率高一些。但較近研究表明BPEI的分枝度高有利于形成小的轉染復合物,從而提高轉染效率,但同時細胞毒性也增大。超很高枝的、較柔性的PEI衍生物含有額外的仲胺基和叔胺基,在染實驗中發現這種PEI的毒性低,但轉染效率卻較高。GenEscort是采用各種分枝狀和超很高枝狀的小分子PEI與各種含有生理條件下可降解鍵的交聯劑交聯,合成出的一系列很高枝的...
穩定轉染細胞系的篩選:生長的細胞比不分裂的細胞更快的受到GENETICIN物品的影響。轉染后,在開始篩選前等待48-72小時,使細胞表達足夠量的抗性酶,保證在開始篩選時可以自我保護。轉染后48-72小時倒掉培養基,加入含有GENETICIN物品的培養基,物品的濃度根據劑量反應曲線確定,足夠殺死未轉染細胞。因為許多因子影響到篩選所需的GENETICIN物品的較佳濃度,包括細胞類型,培養基和血清濃度等,所以有必要對每種細胞作一個劑量反應曲線,確定較佳濃度。篩選較多可能需要一周時間,因為在致死劑量的GENETICIN物品存在條件下,細胞會分裂1-2次。在次培養細胞時使用較低劑量的物品,一般是篩選劑量...
細胞轉染的原理、操作步驟以及小技巧:脂質體轉染操作步驟:(1)細胞培養:取6cm細胞皿,向每孔中加入2mL含1~2×105個細胞培養液,37℃ CO2培養密度至40%~60%,密度過大,轉染后不利篩選細胞。(2) 轉染液制備:在EP管中制備以下兩液(為轉染每一個孔細胞所用的量)A液:用不含血清培養基稀釋1ug 質粒DNA。B液:用不含血清培養基稀釋2ul脂質體。分別將A液與B液輕彈混勻,靜置5分鐘。(3)吸取B液加入至A液中,輕彈混勻。室溫中置10-15分鐘。(4)轉染準備:用1mL不含血清培養液漂洗兩次,再加入4mL不含血清培養液。(5)轉染:把A/B復合物緩緩加入培養液中,搖勻,37℃溫箱...
轉染的注意事項:細胞鋪板密度用于轉染的較佳細胞密度根據不同的細胞類型或應用而異。一般轉染時,貼壁細胞密度為70%-90%,懸浮細胞密度為2×106-4×106細胞/ml時效果較好。確保轉染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉染效率對細胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數目的增加可以增加轉染活性和細胞產量。在三種不同密度進行細胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應增加了。這些結果說明,對于轉染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質體試劑的量會因細胞密度而異。大部分細胞可以在無血清培養基中幾個小時內保...
細胞轉染的注意事項:轉染是將外源性基因導入細胞內的一種專門技術。分為物理介導方法:電穿孔法、顯微注射和基因;化學介導方法:如經典的磷酸鈣共沉淀法、脂質體轉染方法、和多種陽離子物質介導的技術;生物介導方法:有較為原始的原生質體轉染,和現在比較多見的各種細菌介導的轉染技術。理想細胞轉染方法,應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優點。細菌介導的轉染技術,是目前轉染效率較高的方法,同時具有細胞毒性很低的優勢。但是細菌轉染方法的準備程序復雜,常常對細胞類型有很強的選擇性,在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學介導的轉染方法,則各有其特點。需要指出的一點,無論采用哪種轉染技術,要獲得較優的轉染結果,可能都需要...
細胞轉染效率低下的幾個大坑:1.試劑過期有時候轉染效率低下,還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當年做轉染整整半年,百思不得其解。較后發現,原來是Lipofectamine 2000過期了。換了之后,立馬成功。根據我的經驗,盡量使用開封半年內的,因為過了半年后,就算沒有過失效期,但是細胞毒性較大增加,而轉染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢,影響實驗進度哈。2.未加血清轉染后未及時加入血清,會導致細胞大量死亡。一般要在轉染后的4-6小時換液且換為有血清的培養基。根據毛博的經驗,其實也可以在原來的無血清培養基里面滴加血清。這個時候,較好不要換液,不要打擾細胞,讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加...
細胞轉染:(1)轉染試劑的準備A.將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。B.震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩,。(2)選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質體體積:DNA質量)來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養基。加入合適質量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉染試劑,再次震蕩。(3)將混合液在室溫放置10—15分鐘。(4)吸去培養板中的培養基,用PBS或者無血清培養基清洗一次。(5)加入混合液,將細胞放回培養箱中培養一個小時。(6)到時后,根據細胞種類決定是否移除混合液,之后加入完全培養基繼續培養24-48小時。瞬時表...
細胞轉染操作方法:轉染 ,是將外源性基因導入細胞內的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉染目前已成為實驗室工作中經常涉及的基本方法。轉染大致可分為物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因屬于通過物理方法將基因導入細胞的范例;化學介導方法很多,如經典的磷酸鈣共沉淀法、脂質體轉染方法、和多種陽離子物質介導的技術;生物介導方法,有較為原始的原生質體轉染,和現在比較多見的各種細菌介導的轉染技術。理想細胞轉染方法,應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優點。細菌介導的轉染技術,是目前轉染效率較高的方法,同時具有細胞毒性很低的優勢。但是,細菌轉染方法的準備程序復雜,常常對細胞類型...
如何提高細胞轉染實驗效率:優化細胞生長狀態密切觀察您的細胞;確保它們狀態良好。在開始轉染細胞之前,先制定一個適當的種板方案,使細胞密度從轉染開始到結束都保持較佳狀態。增加成功幾率—細胞是轉染過程中的一個關鍵元素,它可以是影響結果的一致性和質量的較重要的變量。此外,還常用促有絲分裂刺激物(如,細菌轉化,生長因子,條件培養基,以及滋養細胞)來活化原代培養細胞。貼壁細胞相比較懸浮細胞—在轉染效率方面貼壁細胞和懸浮細胞之間的差異明顯。天生趨于懸浮的細胞(如HL 60,Jurkat)非常難以轉染。相反,天生為貼壁的細胞(如HEK,CHO)則可適應懸浮生長的條件。重新接種于培養皿或瓶,較好在轉染前4小時換...
細胞轉染方法:1.脂質體轉染法陽離子脂質體表面帶正電荷,能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內,形成DNA脂復合物,也能被表面帶負電的細胞膜吸附,再通過融合或細胞內吞進入細胞。脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中,是目前實驗室較方便的轉染方法之一,其轉染率較高,優于磷酸鈣法。由于脂質體對細胞有一定的毒性,所以轉染時間一般不超過24小時。常用細胞類型:cos-7 、BHK、NIH3T3 、Hela等2.電穿孔轉染法電流能夠可逆地擊穿細胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進入胞內,這種方法就是電穿孔。當遇到某些脂質體轉染效率很低或幾乎無法轉入時建議用電穿孔法轉染。...
穩定轉染細胞系的篩選:生長的細胞比不分裂的細胞更快的受到GENETICIN物品的影響。轉染后,在開始篩選前等待48-72小時,使細胞表達足夠量的抗性酶,保證在開始篩選時可以自我保護。轉染后48-72小時倒掉培養基,加入含有GENETICIN物品的培養基,物品的濃度根據劑量反應曲線確定,足夠殺死未轉染細胞。因為許多因子影響到篩選所需的GENETICIN物品的較佳濃度,包括細胞類型,培養基和血清濃度等,所以有必要對每種細胞作一個劑量反應曲線,確定較佳濃度。篩選較多可能需要一周時間,因為在致死劑量的GENETICIN物品存在條件下,細胞會分裂1-2次。在次培養細胞時使用較低劑量的物品,一般是篩選劑量...
細胞轉染,你至少要掌握以下幾點:主要有下面幾種方法::化學法:磷酸鈣法、DEAE-右旋糖苷法、陽離子脂質體法;物理法:電穿孔法、顯微注射法、顆粒傳遞法;細菌介導法:逆轉錄細菌、腺細菌A. 陽離子脂質體法:帶正電的脂質體與核酸帶負電的磷酸基團形成復合物被細胞內吞。特點:簡單通用,適用性廣,轉染效率高,重復性好,但轉染時需除血清,轉染效率隨細胞類型變化大。由于脂質體復合物與貼壁細胞的接觸機會遠大于懸浮細胞,所以貼壁比懸浮轉染效率要高。懸浮細胞建議使用電穿孔法。B. 電穿孔法:利用高壓電脈沖對細胞膜的干擾,使其形成利于核酸進入的微孔。通過緩沖液的作用以及脂質與內體膜融合,增大內體的內部滲透壓。重慶細...
細胞轉染的原理、操作步驟以及小技巧:一、脂質體(Liposome)轉染方法原理脂質體作為體內和體外輸送載體的工具,已經研究的十分普遍,中性脂質體是利用脂質膜包裹DNA,借助脂質膜將DNA導入細胞膜內。帶正電的陽離子脂質體,DNA并沒有預先包埋在脂質體中,而是帶負電的DNA自動結合到帶正電的脂質體上,形成DNA-陽離子脂質體復合物,從而吸附到帶負電的細胞膜表面,經過內吞被導入細胞。優點:與其它方法相比,有較高的效率和較好的重復性,它適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中,是目前條件下較方便的轉染方法之一。對于轉染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質體試劑的量會因細胞密度而異。北京細胞高效轉染試劑...
細胞電轉染實驗的幾點建議:1. 電場強度要合適合適的電場強度對于電轉染實驗非常重要,電場強度不能過高,過高會增加細胞的死亡率;也不能過低,過低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同細胞系具有不同的較佳場強值,實驗前應測定所轉染細胞系的較佳電場強度。2. 細胞狀態要好用于電轉的細胞一般選取處于對數生長期的細胞(15代以內,傳代后2d)。因為處于對數生長期的細胞分裂旺盛,表面結構致密比穩定期的細胞差,電轉后,細胞膜的恢復能力強,而且處于有絲分裂期的細胞更容易接受外源DNA.對于原代細胞,可用促有絲分裂刺激物進行細胞活化。寧波天津細胞高效轉染試劑細胞轉染效率低下的幾個大坑:1. 細胞污染細胞污染也...
如何高效率實現細胞轉染:陽離子脂質體轉染試劑脂質轉染試劑,以其適用宿主范圍廣,操作簡便,對細胞毒性小,轉染效率高受到研究者們的青睞。脂質體(liposome)是一種人工膜,在水相中形成具有雙分子層結構的球形封閉囊泡。脂質體可以和帶負電荷的核酸結合后重新形成復合物,當復合物接近細胞膜時,通過內吞作用形成內體(endosomes)進入細胞,通過緩沖液的作用以及脂質與內體膜融合,增大內體的內部滲透壓,使內體結構破壞,釋放出核酸。隨后DNA復合物被釋放進入細胞核內。對于普通細胞系,一般的瞬時轉染方法多采用脂質體法。利用脂質體轉染法較重要的就是防止其毒性,因此脂質體與質粒的比例,細胞密度以及轉染的時間長...
細胞轉染那些事兒:1. 選擇傳代次數較低并處于對數生長期的細胞進行轉染。對大多數細胞而言,均需要在轉染當天或前現在鋪板,第二天上午進行轉染,48h后收集細胞進行功能檢測。對于原代細胞,可用促有絲分裂刺激物進行細胞活化。2.對于貼壁細胞,一般要求在轉染前一日,用胰酶處理為單細胞懸液,重新接種于培養皿或瓶,較好在轉染前4小時換一次新鮮培養液。3.支原體污染會嚴重降低細胞轉染的效率,且支原體不會像細菌污染那么明顯,因而轉染前可用環丙沙星處理細胞以除去支原體。4.細胞轉染時需要一定的細胞密度,以70-90%(貼壁細胞)或2×106-4×106細胞/ml(懸浮細胞)為宜。選擇傳代次數較低并處于對數生長期...
細胞轉染實驗簡介:實驗原理外源基因進入細胞主要有四種方法:電擊法、磷酸鈣法和脂質體介導法和細菌介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質粒進入;磷酸鈣法和脂質體法是利用不同的載體物質攜帶質粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進入細胞;細菌法是利用包裝了外源基因的細菌傳染細胞的方法使得其進入細胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實驗條件控制較嚴、難度較大;細菌法的前期準備較復雜、而且可能對于細胞有較大影響;所以現在對于很多普通細胞系,一般的瞬時轉染 方法多采用脂質體法。其可降解性對體內應用也具有重要的意義。濟南正規細胞高效轉染試劑廠家供應如何提高細胞轉染實驗效率:優化細胞生長狀態密切觀察...
如何有效提高細胞轉染實驗效率:1.選擇高效的轉染方法不同轉染試劑有不同的轉染方法,但大多大同小異。轉染時應跟據具體轉染試劑推薦的方法,但也要注意,因不同實驗室培養的細胞性質不同,質粒定量差異,操作手法上的差異等,其轉染效果可能不同,應根據實驗室的具體條件來確定較佳轉染條件。2.確保所構建載體的質量。轉染載體的構建(細菌載體,質粒DNA,RNA,PCR產物,寡核苷酸等)也影響轉染結果。細菌載體對特定宿主細胞傳染效率較高,但不同細菌載體有其特定的宿主,有的還要求特定的細胞周期,如逆轉錄細菌需侵染分裂期的宿主細胞,此外還需考慮一些安全問題(如基因污染)。除載體構建外,載體的形態及大小對轉染效率也有不...
細胞轉染實驗注意事項:1.如為貼壁生長細胞,一般要求在轉染前一日,必須應用胰酶處理成單細胞懸液,重新接種于培養皿或瓶,轉染當日的細胞密度以70-90%(貼壁細胞)或2×106-4×106細胞/ml(懸浮細胞)為宜,較好在轉染前4h換一次新鮮培養液。2.用于轉染的質粒DNA必須無蛋白質,無RNA和其他化學物質的污染,OD260/280比值應在1.8以上。3.培養基中的血清在開始準備DNA和陽離子脂質體試劑稀釋液時要使用無血清的培養基,因為血清會影響復合物的形成。其實,只要在DNA-陽離子脂質體復合物形成時不含血清,在轉染過程中是可以使用血清的。在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學介導的轉染方法...
細胞轉染之PEI 轉染法:1.細胞分盤:通過胰酶消化收集細胞,用適當的完全培養基以 1×105 至 4×105細胞/cm2 的密度平鋪細胞于 35 mm 培養皿上(根據實驗需要選擇培養皿,使細胞貼壁后所占面積達到培養皿總面積的 70-90%)。將細胞置于含 5%CO2 的 37℃溫箱中孵育 8-24 h,當細胞貼壁完全后即可開始轉染。轉染前 2 h 換液(用 1.5 ml 無血清培養基置換舊的培養基)。注:PEI轉染法對細胞生長有克制作用,在換液前細胞幾乎不生長,所以需要密度比較大時做轉染。2.制備PEI-DNA 混合物以 35 mm 組織培養皿用 240 μl 反應總體積為例。先在無菌EP管...
細胞轉染方法:1.脂質體轉染法陽離子脂質體表面帶正電荷,能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內,形成DNA脂復合物,也能被表面帶負電的細胞膜吸附,再通過融合或細胞內吞進入細胞。脂質體轉染適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中,是目前實驗室較方便的轉染方法之一,其轉染率較高,優于磷酸鈣法。由于脂質體對細胞有一定的毒性,所以轉染時間一般不超過24小時。常用細胞類型:cos-7 、BHK、NIH3T3 、Hela等2.電穿孔轉染法電流能夠可逆地擊穿細胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進入胞內,這種方法就是電穿孔。當遇到某些脂質體轉染效率很低或幾乎無法轉入時建議用電穿孔法轉染。...
如何高效率實現細胞轉染:瞬時轉染與穩定轉染常規轉染技術根據基因表達時間的長短可分為兩大類,一類是瞬時轉染,一類是穩定轉染(很長轉染)。瞬時轉染的細胞中,外源基因得以表達但它們并不會整合到細胞的基因組中,也就不會被復制。細胞中瞬時轉染的外源基因表達時間有限,通常*持續幾天,直到外源基因在細胞分裂過程中因各種因素丟失為止。在瞬時轉染質粒中往往都含有一個報告基因,來指示細胞中目標基因是否存在,這樣的報告基因一般可以在轉染后一兩天內檢測到。大部分細胞可以在無血清培養基中幾個小時內保持健康。開封細胞高效轉染試劑價格如何提高細胞轉染實驗效率:優化細胞生長狀態密切觀察您的細胞;確保它們狀態良好。在開始轉染細...
細胞轉染常用步驟:1.轉染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。②震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩。2.選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質體體積:DNA質量)來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養基。加入合適質量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉染試劑,再次震蕩。3.將混合液在室溫放置10―15分鐘。4.吸去培養板中的培養基,用PBS或者無血清培養基清洗一次。5.加入混合液,將細胞放回培養箱中培養一個小時。6.到時后,根據細胞種類決定是否移除混合液,之后加入完全培養基繼續培養24-48小時。細胞易于生長到高...
細胞轉染為什么不能加血清:不同的細胞及轉染試劑要求轉染的條件是不同 的。較好是在靠前次實驗前做一個預實驗,比如:HeLa,293,CHO,COS7, MCF-7,HepG2等細胞,是否加血清,對不同的細胞是有不同的影響的,有些細胞是可以有血清的,有些加血清就會受影響。轉染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養基,其一因為普通轉染試劑對細胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的細胞的死亡。轉染時不加血清是防止血清的干擾作用,轉染后可適時加入。加入過早會引起未轉染細胞的優勢生長,過晚會引起較多細胞死亡。可實時觀察1/5細胞變圓的時候加入血清。其它物理和化學介導的轉染方法,則各有其特點。太原細...
細胞轉染實驗注意事項:1.培養基中的物品物品是影響轉染的培養基添加物。這些物品一般對于真核細胞無毒,但陽離子脂質體試劑增加了細胞的通透性,使物品可以進入細胞。這降低了細胞的活性,導致轉染效率降低。這時候可以選擇Entranster轉染試劑,非脂質體試劑,培養基可加物品,避免了細胞染菌。2.設置陽性對照和陰性對照。3.一般在轉染24-48h,靶基因即在細胞內表達。根據不同的實驗目的,24-48h后即可進行靶基因表達的檢測實驗。4.如若建立穩定的細胞系,則可對靶細胞進行篩選,根據不同基因載體中所含有的抗性標志選用相應的藥物,常用的真核表達基因載體的標志物有潮霉素和新霉素等。轉染 ,是將外源性基因導...