細胞轉染效率低下的幾個大坑：1.準備不足做脂質(zhì)體轉染的時候，在開展正式實驗前要多做預試驗，優(yōu)化轉染條件。優(yōu)化轉染條件包括：脂質(zhì)體的用量、DNA密度、細胞密度、脂質(zhì)體和DNA混合孵育時間等等。2.電壓過大做電轉的時候，如果電壓太大，往往會發(fā)生細胞大量死亡的情況。不同的細胞，需要的電壓是不一樣的。這就要求我們多做預實驗，多摸索條件。對于大多數(shù)細胞來說，其較佳電壓位于250-1250v/cm。另外，就是進行轉染的細胞應該處于對數(shù)生長期。處于對數(shù)生長期的細胞的抗損傷能力是較強的。細胞濃度應該處于5x106到1x107／mL之間。每次轉染的質(zhì)粒應該控制在4-6μg，如果﹥10μg，轉染效率也較大降低。電擊后，應該將DNA和細胞混合液在室溫下放置10分鐘，使細胞恢復損傷。轉化、轉染、轉導幾個名詞是從事生命科學研究的初學者經(jīng)常碰到的。北京正規(guī)細胞高效轉染試劑銷售廠家

瞬時轉染和轉染效率的監(jiān)測：基因的瞬時表達在24-72小時內(nèi)就結束了。這種快速的瞬時表達非常適用于驗證質(zhì)粒表達和監(jiān)測轉染步驟的效率。可以使用報告基因來確定優(yōu)化條件，其表達蛋白易檢測，在目的細胞中不含此蛋白或水平很低。常用的報告基因包括氯霉素乙酰轉移酶（CAT），綠色熒光蛋白（GFP），熒光素酶（Lux或Luc）以及b-半乳糖苷酶（b-gal）?？梢允褂煤唵蔚姆峭凰胤椒z測b-gal的表達以測定轉染效率和活性。pCMVSPORT-bgal質(zhì)粒包含CMV啟動子調(diào)控下的LacZ基因，轉染入真核細胞內(nèi)后可以直接表達bgal。結合簡單的檢測步驟，可以做為監(jiān)測轉染條件的一種方便靈敏的方法太原正規(guī)細胞高效轉染試劑哪家便宜這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。

細胞轉染：(1)轉染試劑的準備A.將400ul去核酸酶水加入管中，震蕩10秒鐘，溶解脂狀物。B.震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存，使用前還需震蕩，。(2)選擇合適的混合比例(1：1-1：2/脂質(zhì)體體積：DNA質(zhì)量)來轉染細胞。在一個轉染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA，震蕩后在加入合適體積的轉染試劑，再次震蕩。(3)將混合液在室溫放置10—15分鐘。(4)吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基，用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。(5)加入混合液，將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。(6)到時后，根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液，之后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24-48小時。

如何高效率實現(xiàn)細胞轉染：陽離子脂質(zhì)體轉染試劑脂質(zhì)轉染試劑，以其適用宿主范圍廣，操作簡便，對細胞毒性小，轉染效率高受到研究者們的青睞。脂質(zhì)體（liposome）是一種人工膜，在水相中形成具有雙分子層結構的球形封閉囊泡。脂質(zhì)體可以和帶負電荷的核酸結合后重新形成復合物，當復合物接近細胞膜時，通過內(nèi)吞作用形成內(nèi)體（endosomes）進入細胞，通過緩沖液的作用以及脂質(zhì)與內(nèi)體膜融合，增大內(nèi)體的內(nèi)部滲透壓，使內(nèi)體結構破壞，釋放出核酸。隨后DNA復合物被釋放進入細胞核內(nèi)。對于普通細胞系，一般的瞬時轉染方法多采用脂質(zhì)體法。利用脂質(zhì)體轉染法較重要的就是防止其毒性，因此脂質(zhì)體與質(zhì)粒的比例，細胞密度以及轉染的時間長短和培養(yǎng)基中血清的含量都是影響轉染效率的重要因素，通過實驗優(yōu)化合適的轉染條件對于轉染效率的提高很重要。細胞轉染是完成這一過程的必需步驟。

細胞轉染為什么不能加血清：不同的細胞及轉染試劑要求轉染的條件是不同的。較好是在靠前次實驗前做一個預實驗，比如：HeLa，293，CHO，COS7，MCF－7，HepG2等細胞，是否加血清，對不同的細胞是有不同的影響的，有些細胞是可以有血清的，有些加血清就會受影響。轉染后在6小時左右較好換液且換為有血清的培養(yǎng)基，其一因為普通轉染試劑對細胞的毒性作用大，其二可降低因血清的缺乏引起的細胞的死亡。轉染時不加血清是防止血清的干擾作用，轉染后可適時加入。加入過早會引起未轉染細胞的優(yōu)勢生長，過晚會引起較多細胞死亡?？蓪崟r觀察1/5細胞變圓的時候加入血清。其可降解性對體內(nèi)應用也具有重要的意義。重慶正規(guī)細胞高效轉染試劑哪家便宜

脂質(zhì)體轉染法陽離子脂質(zhì)體表面帶正電荷。北京正規(guī)細胞高效轉染試劑銷售廠家

細胞轉染實驗簡介：實驗原理外源基因進入細胞主要有四種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質(zhì)體介導法和細菌介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質(zhì)粒進入;磷酸鈣法和脂質(zhì)體法是利用不同的載體物質(zhì)攜帶質(zhì)粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進入細胞;細菌法是利用包裝了外源基因的細菌傳染細胞的方法使得其進入細胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實驗條件控制較嚴、難度較大;細菌法的前期準備較復雜、而且可能對于細胞有較大影響;所以現(xiàn)在對于很多普通細胞系，一般的瞬時轉染方法多采用脂質(zhì)體法~北京正規(guī)細胞高效轉染試劑銷售廠家