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上海南昌細胞高效轉染試劑

來源: 發布時間:2021-11-07

細胞轉染簡介:轉染 ,是將外源性基因導入細胞內的一種專門技術。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉染目前已成為實驗室工作中經常涉及的基本方法。轉染大致可分為物理介導、化學介導和生物介導三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因屬于通過物理方法將基因導入細胞的范例;化學介導方法很多,如經典的磷酸鈣共沉淀法、脂質體轉染方法、和多種陽離子物質介導的技術;生物介導方法,有較為原始的原生質體轉染,和現在比較多見的各種細菌介導的轉染技術。理想細胞轉染方法,應該具有轉染效率高、細胞毒性小等優點。細菌介導的轉染技術,是目前轉染效率較高的方法,同時具有細胞毒性很低的優勢。但是,細菌轉染方法的準備程序復雜,常常對細胞類型有很強的選擇性,在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學介導的轉染方法,則各有其特點。表達水平與位臵無關,不會受到周圍染色體元件的影響。上海南昌細胞高效轉染試劑

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如何有效提高細胞轉染實驗效率:1.選擇合適的轉染試劑不同細胞系轉染效率通常不同,但細胞系的選擇通常是根據實驗的需要,因此在轉染實驗前應根據實驗要求和細胞特性選擇適合的轉染試劑。每種轉染試劑都會提供一些已經成功轉染的細胞株列表和文獻,通過這些資料可選擇較適合實驗設計的轉染試劑。當然,較適合的是高效、低毒、方便、廉價的轉染試劑。2.保持較佳的細胞狀態一般低的細胞代數(<50)能確保基因型不變。較適合轉染的細胞是經過幾次傳代后達到指數生長期的細胞,細胞生長旺盛,較容易轉染。細胞培養在實驗室中保存數月和數年后會經歷突變,總染色體重組或基因調控變化等而演化。這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。也就是說同一種系的細胞株,在各實驗室不同培養條件下,其生物學性狀發生不同程度的改變,導致其轉染特性也發生變化。因此,如果發現轉染效率降低,可以試著轉染新鮮培養的細胞以恢復較佳結果。徐州正規細胞高效轉染試劑銷售廠家這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。

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細胞轉染的原理、操作步驟以及小技巧:脂質體轉染操作步驟:(1)細胞培養:取6cm細胞皿,向每孔中加入2mL含1~2×105個細胞培養液,37℃ CO2培養密度至40%~60%,密度過大,轉染后不利篩選細胞。(2) 轉染液制備:在EP管中制備以下兩液(為轉染每一個孔細胞所用的量)A液:用不含血清培養基稀釋1ug 質粒DNA。B液:用不含血清培養基稀釋2ul脂質體。分別將A液與B液輕彈混勻,靜置5分鐘。(3)吸取B液加入至A液中,輕彈混勻。室溫中置10-15分鐘。(4)轉染準備:用1mL不含血清培養液漂洗兩次,再加入4mL不含血清培養液。(5)轉染:把A/B復合物緩緩加入培養液中,搖勻,37℃溫箱置6~24小時,吸除無血清轉染液,換入正常培養液繼續培養。(6)瞬時轉染后,可在48h-72h細胞長滿之后,提取細胞蛋白或者RNA,驗證敲減/過表達效率。

如何有效提高細胞轉染實驗效率:1.選擇高效的轉染方法不同轉染試劑有不同的轉染方法,但大多大同小異。轉染時應跟據具體轉染試劑推薦的方法,但也要注意,因不同實驗室培養的細胞性質不同,質粒定量差異,操作手法上的差異等,其轉染效果可能不同,應根據實驗室的具體條件來確定較佳轉染條件。2.確保所構建載體的質量。轉染載體的構建(細菌載體,質粒DNA,RNA,PCR產物,寡核苷酸等)也影響轉染結果。細菌載體對特定宿主細胞傳染效率較高,但不同細菌載體有其特定的宿主,有的還要求特定的細胞周期,如逆轉錄細菌需侵染分裂期的宿主細胞,此外還需考慮一些安全問題(如基因污染)。除載體構建外,載體的形態及大小對轉染效率也有不同的影響,如前面提到的超螺旋及線性DNA對瞬時和穩定轉染的影響。如果基因產物對細胞有毒性作用,轉染也很難進行,因此選擇組成或可調控,強度合適的啟動子也很重要,同時做空載體及其它基因的相同載體構建的轉染正對照可排除毒性影響的干擾。對于真核生物,轉染就是原核生物中轉化的同義詞。

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轉染的注意事項:培養基中的物品物品,比如青霉素和鏈霉素,是影響轉染的培養基添加物。這些物品一般對于真核細胞無毒,但陽離子脂質體試劑增加了細胞的通透性,使物品可以進入細胞。這降低了細胞的活性,導致轉染效率低。所以,在轉染培養基中不能使用物品,甚至在準備轉染前進行細胞鋪板時也要避免使用物品。這樣,在轉染前也不必潤洗細胞。對于穩定轉染,不要在選擇性培養基中使用青霉素和鏈霉素,因為這些物品是GENETICIN選擇性物品的競爭性克制劑。另外,為了保證無血清培養基中細胞的健康生長,使用比含血清培養基更少的物品量。 大多數已建立的細胞系都是非整倍體,原代培養包括了表達不同基因組合的細胞的混合物。細胞培養在實驗室中保存數月和數年后會經歷突變,總染色體重組或基因調控變化等而演化,這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。如果隨時間發現這種變化,融化一管新鮮的細胞可能會恢復原先的轉染活性。比如,新鮮融化的NIH 3T3細胞比傳代8次的細胞表現出更高的轉染效率,融化細胞的進一步傳代并沒有降低轉染效率。因此,如果觀察到轉染效率降低,可以試著轉染新鮮培養的細胞以恢復較佳結果。果觀察到轉染效率降低,可以試著轉染新鮮培養的細胞以恢復較佳結果。蕪湖正規細胞高效轉染試劑生產廠家

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細胞轉染實驗的方法有哪些:1.脂質體法。中性脂質體是利用脂質膜包裹DNA,借助脂質膜將DNA導入細胞膜內。帶正電的陽離子脂質體則不同,DNA并沒有預先包埋在脂質體中,而是帶負電的DNA自動結合到帶正電的脂質體上,形成DNA-陽離子脂質體復合物,從而吸附到帶負電的細胞膜表面,經過內吞被導入細胞。脂質體法始于1987年,此法的出現使得轉染效率、轉染的穩定性和可重復性較大提高。陽離子脂質體細胞毒性相對較高,對不同的細胞可能會干擾細胞的代謝。2.非脂質體轉染 。較新的納米聚合物轉染試劑,如Entranster試劑,納米材料,細胞毒性小,轉染效率高,漸漸成為各大實驗室的選擇轉染試劑。上海南昌細胞高效轉染試劑

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與原代細胞相關的擴展資料:

【更多】
原代細胞(primary culture cell)是指從機體取出后立即培養的細胞。有人把培養的第1代細胞與傳10代以內的細胞統稱為原代 細胞培養。原代細胞不僅廣泛應用于分子、 細胞生物學和生物醫學基礎研究,如 蛋白質組學、基因組學、 細胞株(系)研究、DNA,RNA和遺傳學研究等,還可應用于當今熱門的 生物醫藥產業如 藥物篩選、 藥物代謝和毒理研究、**藥物的研究等。原代細胞在生物醫藥領域有不可替代性作用,市場前景廣闊。
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