從細胞中釋放AAV載體的基本機械技術是反復冷凍/解凍，然后是低速離心步驟然而，但是這種技術很難放大生產。機械均質，如法式壓濾，是另一種裂解方法，在這種方法中，細胞膜在高壓剪切力作用下發生破裂。雖然這種方法是可放大的，但是由于剪切應力引起的聚集和沉淀，往往會導致產品損失。而化學裂解方式，例如Triton X-100在病毒載體純化過程有較高的總收率，而且易于放大。但是也有其局限性。研究表明，Triton X-100造成了一些急性口服毒性、眼睛損傷、皮膚刺激和慢性水生毒性。因此，該去垢劑在2016年被歐洲化學品管理局（European Chemicals Agency）被列為需要高度關注的物質。SAN HQ高鹽核酸酶在高鹽濃度下活性更適，DNA去除效率更高。江西基因藥物生產用高鹽核酸酶70921-202

監管部門對HCD的殘留量有明確的規定。美國FDA發布的指導原則中指出生物制品HCD殘余限度為 100pg/劑，對于大劑量生物制品如單克隆抗體，根據其殘留DNA來源及給藥途徑，殘留量可放寬至 10ng/劑。細胞基因藥物終產品的DNA殘留有兩種來源，分別是宿主細胞DNA（HCD）和轉染用的質粒。質粒和HCD的存在形式不同，去除效率也差別很大。其中，質粒是裸露的DNA雙鏈，帶強負電荷，通過色譜純化主要是離子交換能夠很高效去除；HCD則是以核小體緊密折疊形成的染色質形式存在，幾乎不以裸DNA形式存在，所以很難去除。福建上海倍篤生物高鹽核酸酶70921-150鑒于其在高鹽條件下的較高活性，SAN HQ高鹽核酸酶在不損失載體產量和活性的情況下改善了下游工藝。

三種AAV載體的生產體系（三質粒瞬轉體系、桿狀病毒表達載體體系以及包裝細胞體系） 中都會出現三種衣殼：完整衣殼（full capsid）、部分衣殼（partial capsid），和空衣殼（empty capsid）。其中完整衣殼包含正確的DNA序列，是人們所期待的產品；部分衣殼和空衣殼包含部分不包含目的基因，屬于生產中的雜質，約占細胞生產的總AAV顆粒的50%-90%。空衣殼/部分衣殼有如下幾種危害：1), 影響產品的純度，2), 增加終產品的免疫原性，3), 與完整衣殼競爭infection細胞上的載體結合受體，抑制完整衣殼的轉導，4),增加總體病毒載量。部分衣殼與空衣殼地存在嚴重地影響了AAV產品的安全性和有效性，因此監管機構強烈建議在整個生產過程中監控空/完整衣殼比（空殼率）。

綜合腺相關病毒AAV制備的三個工藝階段介紹，可以看出下游處理可以占病毒生產總成本的很大一部分，而且難度也是非常大，尤其是純化過程。原因之一是由于有超過100種不同血清型的變體AAV衣殼，不同血清型的AAV蛋白存在差異。因此，各種血清型的表面特性增加AAV純化難度。原因之二是：針對工藝和產品相關的雜質（包括宿主細胞物質，DNA和空衣殼），缺乏一個有效和可重復的平臺方法，尤其是來從空衣殼中分離出完整的衣殼。為了解決以上問題，國內外大的藥企公司都致力于純化新產品的開發，以期達到：（1）實現病毒顆粒的分離（2）減少產品相關雜質（3）保持效力和產量的目標。高鹽濃度下，宿主DNA與蛋白質能夠更高效解離，從而更容易被降解。

一般來說，生物生產工藝用的核酸酶以BenzonaseTM（BenzonaseTM是Merck的注冊商標）為主，能高效降解任何形式（雙鏈、單鏈、線狀、環狀）的DNA和RNA。該酶來自于大自然界普遍存在的S.Marcescen，通過E.coli發酵生產得到。該酶的適宜反應條件是低鹽濃度范圍（<100mM鹽濃度），且酶活隨著鹽濃度上升而下降，在300mM鹽濃度時酶活幾乎喪失。對于細胞基因藥物常用的兩種病毒載體LV和AAV，LV由于含有脂包膜結構一般都在生理鹽條件下存在，而AAV在高鹽條件下不易團聚、更穩定。而在生理鹽濃度及更高濃度條件下，Benzonase活性受到抑制。SAN HQ高鹽核酸酶的檢測標準，都符合USP-EP要求。山西基因藥物生產用高鹽核酸酶70921-160

SAN HQ GMP是全球shou款市售GMP級別高鹽核酸酶，于2023年Q4上市。江西基因藥物生產用高鹽核酸酶70921-202

在不同的鹽濃度條件下，AAV病毒載體的存在形式不同。低鹽濃度條件下，AAV病毒顆粒表面會通過電荷作用等非特異結合到HCD上，從而產生病毒顆粒團聚現象。隨著溶液鹽濃度上升，AAV病毒顆粒與HCD的離子相互作用會被破壞，AAV病毒顆粒會逐漸解離。當鹽濃度升到更高范圍（>400mM左右），AAV病毒顆粒與HCD的結合更弱，AAV顆粒更穩定。因此，在高鹽濃度溶液中，AAV顆粒更加穩定，且有數據表明高鹽濃度不會削弱AAV的侵染能力。所以，我們推薦提高AAV病毒生產中的鹽濃度。江西基因藥物生產用高鹽核酸酶70921-202

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