Mayer等（2023）以measles virus(麻疹病毒，MV)為例，評估了四種不同核酸酶（BenzonaseTM、DeneraseTM、M-SAN HQ中鹽核酸酶及SAN HQ高鹽核酸酶）對于染色質DNA去除的效果。Vero細胞通過微載體貼壁培養來生產麻疹病毒MV，72hr后收獲上清液，使用3μm cellulose filter(Sartorius)過濾后分裝多份，置于-80℃保存便于后續使用。在解凍后的上清中調節對應鹽濃度，并加入50 U/ml核酸酶，37℃孵育2hr進行消化，消化后留樣；將消化后上清液過Capto Core 700 (Cytiva)柱子，收集流穿液，之后洗雜、洗脫，并分別留樣。通過SDS-PAGE分析發現，相比Benzonase等傳統核酸酶，在生理鹽條件下M-SAN HQ中鹽核酸酶更高效將染色質DNA剪切成更小片段，甚至將核小體DNA剪切更徹底。鑒于其在高鹽條件下的較高活性，SAN HQ高鹽核酸酶在不損失載體產量和活性的情況下改善了下游工藝。湖南500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921

在生物工藝中，核酸酶的主要作用是高效消化宿主細胞DNA（HCD），并將其分解成足夠小的片段，以便在下游純化過程中去除。雖然大多數核酸酶可以在生理鹽條件下高效地將裸DNA降解成微小片段，比如Benzonase和SANs都可以把dsDNA分解成小于8nt的寡核苷酸鏈，但實際生產中的核酸污染情況更加復雜。HCD通常以染色質形式存在，與細胞裂解碎片、病毒顆粒等結合在一起，影響核酸酶的識別及剪切。因此，HCD去除的關鍵在于——核酸酶如何在復雜的生產體系中識別并剪切HCD。天津SAN HQ TF高鹽核酸酶70921-202致力于從深海微生物中識別新的冷適應酶，用于分子研究、體外診斷和制藥領域。

有研究發現，桿狀病毒表達載體體系BEV生產的rAAV發生了與293生產體系不同的衣殼蛋白翻譯后修飾（post-translationalmodifications,PTMs）。這一差異是否會影響載體趨向性和轉導效率還需要進一步驗證。除此之外，桿狀病毒多重infection會導致載體蛋白VP1、VP2和VP3比例不一致。盡管如此，BEV/Sf9系統仍然是一種頗有吸引力的大規模臨床級載體生產策略。隨著以后對基因藥物需求的增加，AAV載體的需求量也會與日俱增，而BEV系統能夠降低AAV的成本，未來還是很有發展潛力的。

相比傳統的Benzonase核酸酶，SAN HQ高鹽核酸酶的優勢是在400mM-600mM鹽濃度條件下具有適宜酶活性。在這個條件下，AAV病毒載體聚集更少、更加穩定；SAN HQ的使用能夠簡化生產工藝、降低酶用量及成本，不需額外脫鹽操作；AAV病毒載體得率更高，且HCD殘留更少、AAV產物更穩定。曲光教授在2005年發表的文章中，以AAV2為例探討了引起AAV病毒聚集的因素，并探索了AAV病毒純化和制劑過程中抑制聚集的方法。該文章通過篩選發現，高鹽濃度能夠抑制AAV病毒團聚，讓AAV病毒更加穩定，且高鹽濃度并不削弱AAV病毒的侵染活性。一個美國客戶對SAN HQ高鹽核酸酶純化病毒載體的效率進行了評估。

桿狀病毒表達載體體系Baculovirus/Sf9(Baculovirusexpression vector，BEV)，是應用桿狀病毒表達載體(BEV)系統infect昆蟲細胞Sf9，是一種替代哺乳動物包裝細胞系的生產方案。整個系統包含兩種BEV，其中一個BEV攜帶兩側有ITRs的目的基因，另一BEV則攜帶rep/cap基因。這兩種BEV同時infectSf9即可組裝AAV。由于桿狀病毒具有輔助功能，因此BEV系統與可以穩定表達rep的Sf9細胞相結合，可用于靈活的、高滴度的大規模載體生產。BEV體系安全性好,infection效率高,生產工藝較之sTT更易放大，有更高的體積生產率優勢。ArcticZymes所有產品的開發、生產及銷售等都符合ISO13485:2016質量管理體系標準。安徽上海倍篤生物高鹽核酸酶70921-150

SAN HQ高鹽核酸酶的改善效果與血清型無關。湖南500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921

基因療法制造商面臨的挑戰與抗體療法剛出現時單克隆抗體制造商面臨的挑戰相似。例如，在生產、儲存和處理過程中，單克隆抗體也會受到低滴度、產品和工藝相關雜質和降解的挑戰。盡管與重組單克隆抗體相比，單劑量AAV產品與工藝相關雜質相關的風險可能更低（取決于雜質的類型、劑量和給藥途徑），但這也不能忽視。由于這些相似性，制藥商、化學品和輔料供應商有機會進行合作，并開發創新的解決方案，以實現穩健和成本效益高的AAV產品生產。湖南500mM鹽濃度條件高鹽核酸酶70921