經典的慢病毒載體（LV）的生產工藝如下，——三質粒系統瞬時轉染HEK293細胞系，轉染24小時后LV由轉染陽性細胞生產并排出到培養上清液中；收獲上清培養液后，加入核酸酶去除HCD污染，通過澄清步驟去除大的細胞碎片等雜質；下游純化步驟分離LV載體，純化方法包括切向流過濾TFF、色譜純化及超速離心；純化后的LV病毒顆粒經過無菌過濾，更換到優化后的配方中，灌裝并冷凍保存。每批Car-T生產時取對應量的LV病毒，切忌反復凍融，否則LV病毒會失活。高鹽濃度能夠減少目標產物聚集、增加目標產物溶解度及提高目標產物產量。北京上海倍篤生物高鹽核酸酶70921-202

ArcticZymes Technologies于2017年推出了SAN HQ高鹽核酸酶及其對應的SAN HQ ELISA kit。該試劑盒原理是采用雙抗夾心法定量檢測各種生物制品的中間品、半成品和成品中SAN HQ高鹽核酸酶的殘留含量，特異性的anti-SAN作為捕獲抗體偶聯在96-well plate，生物素Biotin標記anti-SAN作為檢測抗體，鏈霉親和素-HRP偶聯物起到信號放大作用，TMB是終反應底物。該試劑盒特異識別SAN HQ高鹽核酸酶，對其它核酸酶沒有特異性結合。它的定量范圍是0.4-25.6ng/ml，檢測精確度高RSD<=15%，2-8℃條件下保存12個月。青海基因藥物生產用高鹽核酸酶SAN HQ高鹽核酸酶的生產用原輔料是Non-animal和Non-plant來源的。

目前基因藥物領域常用的病毒載體有腺病毒、慢病毒、重組腺相關病毒（rAAV）以及逆轉錄病毒等，其中AAV因其免疫原性極低、安全性高、宿主細胞范圍廣、擴散能力強、表達穩定以及特異性強等優勢脫穎而出。據NIH統計，已有超過200個正在進行或已完成的基因藥物臨床試驗使用rAAV載體。盡管rAAV基因藥物已顯示出巨大的前景，但是強大、穩健而且可放大的基因載體生產制造工藝一直是CGT行業的痛點。目前rAAV生產平臺主要有三種：三質粒瞬轉體系（TransientTransfection, TT）、桿狀病毒表達載體體系(Baculovirusexpression vector，BEV)和包裝細胞體系(Packaging/Producercell line，PCL)。

有研究發現，桿狀病毒表達載體體系BEV生產的rAAV發生了與293生產體系不同的衣殼蛋白翻譯后修飾（post-translationalmodifications,PTMs）。這一差異是否會影響載體趨向性和轉導效率還需要進一步驗證。除此之外，桿狀病毒多重infection會導致載體蛋白VP1、VP2和VP3比例不一致。盡管如此，BEV/Sf9系統仍然是一種頗有吸引力的大規模臨床級載體生產策略。隨著以后對基因藥物需求的增加，AAV載體的需求量也會與日俱增，而BEV系統能夠降低AAV的成本，未來還是很有發展潛力的。SAN HQ具有合規的資質及完善的文件體系，支持制藥領域嚴格的監管要求。

基因藥物常用的AAV載體有三種生產方法，分別是三質粒瞬轉體系、桿狀病毒表達載體體系和包裝細胞體系。其中，20多年前開發的三質粒瞬轉表達技術仍然占據腺相關病毒AAV生產的主流地位，其三質粒分別是Helper質粒（含E2a/b、E4和VARNA基因）、目標基因表達質粒及輔助質粒（含Cap和Rep基因）。雖然AAV病毒載體的血清型不同，但AAV的生產流程基本一致，主要有質粒共轉宿主細胞HEK293、293細胞生產病毒顆粒、從細胞培養上清或/及細胞裂解液中收獲病毒載體、純化/制劑/無菌過濾/灌裝等流程。SAN HQ高鹽核酸酶能夠使載體表面的DNA去除更徹底，得到的AAV病毒顆粒更穩定。甘肅高鹽核酸酶70921-202

US FDA指南要求：重組生物制品終產品中，核酸雜質含量低于10ng/dose。北京上海倍篤生物高鹽核酸酶70921-202

ArcticZymes Technologies致力于提供高質量產品，具有良好的批間一致性、穩定可靠的質量、及時的文件及技術支持。ArcticZymes所有產品的開發、生產及銷售等都符合ISO13485:2016質量管理體系標準；鑒于生物制品更嚴格的質控要求，廠家對鹽活性核酸酶系列產品（Salt Active Nucleases，SANs）的生產及質控，在符合ISO13485:2016體系基礎上，增加了cGMP相應要求，如生產用原輔料是Non-animal和Non-plant來源的，終產品經過0.22μm過濾sterilization，放行檢測包括microbes、fungus及內毒檢測等，所有標準符合USP-EP要求。北京上海倍篤生物高鹽核酸酶70921-202