綜合腺相關病毒AAV制備的三個工藝階段介紹，可以看出下游處理可以占病毒生產總成本的很大一部分，而且難度也是非常大，尤其是純化過程。原因之一是由于有超過100種不同血清型的變體AAV衣殼，不同血清型的AAV蛋白存在差異。因此，各種血清型的表面特性增加AAV純化難度。原因之二是：針對工藝和產品相關的雜質（包括宿主細胞物質，DNA和空衣殼），缺乏一個有效和可重復的平臺方法，尤其是來從空衣殼中分離出完整的衣殼。為了解決以上問題，國內外大的藥企公司都致力于純化新產品的開發，以期達到：（1）實現病毒顆粒的分離（2）減少產品相關雜質（3）保持效力和產量的目標。使用SAN HQ高鹽核酸酶可以更少的酶量獲得更高的去除率，對載體的產量和活性沒有任何負面影響；江西高鹽核酸酶70921-160

ArcticZymes Technologies產品大都來源于深海microbes中，具有一些共同的特性。1. 熱不穩定性，使酶產品相對容易失活，簡化工作流程，方便自動化過程；2. 低溫活性，即在低溫或常溫下具有更高活性，縮短酶與底物的孵育時間，提高反應速度及效率；3. 耐鹽特性，是指大部分酶產品能耐受較高的鹽濃度，拓寬反應體系范圍選擇，在特殊體系的應用場景下具有更為出色的性能表現；4. 獨特特性，極限酶類產品能夠在非常規條件下進行酶促反應，讓一些反應從不可能變為可能。吉林分子研究高鹽核酸酶70921-150SAN HQ終產品放行檢測包括微生物、Fungus及Endotoxin檢測等；

殘留的宿主DNA是生產中產生的雜質，其存在潛在的致瘤性、傳染性和免疫原性等風險。相關研究表明，基因的大小普遍在200bp以上，因此大于200bp有可能會有一定的致病性，而且殘留DNA片段越大，生物制品的風險等級越高。因此，各國監管機構對其提出了嚴格要求。美國食品藥品監督管理局（FDA）在《關于人類基因zhiliao新產品生產指導文件》中明確指出HCD的片段要小于200bp。2022年5月，國家藥品監督管理局藥品評審中心（CDE）發布的《體內基因藥物產品藥學研究與評價技術指導原則（試行）》中也明確指出需對DNA殘留量和殘留片段大小進行控制，建議盡量將DNA殘留片段的大小控制在200bp以下。

離子交換層析 (IEC) 是一種簡單、通用且經濟高效的技術，已成為許多載體純化的關鍵步驟。IEC分為陰離子/陽離子交換柱，其中AEC（Anion-exchange chromatography）適用于AAV純化，是大規模AAV生產中去除空衣殼的主要手段。AAV衣殼亞種之間因表面電荷的差異導致不同的的等電點。空衣殼PI在6.3左右，包裝了完整基因組DNA后的病毒顆粒PI大致為5.9。AAV與基質之間的靜電相互作用正是取決于衣殼的等電點(pI)和緩沖液的pH值。基于這一原理在正電荷固定相上進行樣品的分離純化，去除雜質（如空衣殼和部分衣殼），并有效地回收目的載體。染色質的雙螺旋結構影響DNA的檢測與酶切處理。

有研究發現，桿狀病毒表達載體體系BEV生產的rAAV發生了與293生產體系不同的衣殼蛋白翻譯后修飾（post-translationalmodifications,PTMs）。這一差異是否會影響載體趨向性和轉導效率還需要進一步驗證。除此之外，桿狀病毒多重infection會導致載體蛋白VP1、VP2和VP3比例不一致。盡管如此，BEV/Sf9系統仍然是一種頗有吸引力的大規模臨床級載體生產策略。隨著以后對基因藥物需求的增加，AAV載體的需求量也會與日俱增，而BEV系統能夠降低AAV的成本，未來還是很有發展潛力的。SAN HQ高鹽核酸酶有助于減少了宿主細胞殘留DNA的污染，提高了基因藥物的安全性。山東SAN HQ TF高鹽核酸酶70921-160

SAN HQ高鹽核酸酶的生產用原輔料是Non-animal和Non-plant來源的。江西高鹽核酸酶70921-160

從國內來看，由于 AAV 基因藥物研發管線絕大部分集中在眼科遺傳病上，載體用量較小，三質粒共轉染 AAV 系統足以滿足未來的臨床及商業需求，因此，國內的 AAV 生產系統主要以三質粒為主。然而，考慮到未來 AAV 基因藥物在血液、神經系統、肌肉系統等領域的臨床應用，三質粒系統顯然難以勝任。如藥明生基從國外收購了 OXGENE 的輔助腺病毒 AAV 生產系統 TESSA，據報道較三質粒系統有10倍的提升；而基因藥物 CDMO 企業北京五加和基因則在國內率先采用了陳海峰博士的威洛克公司授權的Bac-to-AAV 系統，憑借公司在病毒載體領域持續30年的研發經驗，不斷摸索、試驗，終于在臨床級生產方面獲得了巨大的成功，為 AAV 基因藥物管線研發公司錦籃基因進行多批次臨床 CDMO 代工生產。江西高鹽核酸酶70921-160