返藍是通過堿性環境（pH 7.0-8.0）使蘇木精染料發生色相轉變的重要步驟。分化后的切片在酸性條件下呈紅褐色，經溫水（約50℃）或弱堿性溶液（如0.1%氨水、Scott藍化液或自來水）處理后，染料分子結構重組，細胞核恢復為穩定的藍紫色。返藍時間通常為5-15分鐘，需根據切片厚度和組織類型調整：較厚切片或富含細胞核的組織（如淋巴結）需延長返藍時間；而薄切片或細胞稀疏組織（如脂肪）則可適當縮短。值得注意的是，自來水返藍可能因水質硬度差異影響效果，建議使用pH緩沖液確保穩定性。整個過程需避免劇烈晃動，防止組織脫片，同時保持溶液清潔，避免沉淀物附著影響觀察。巴氏染色常用于宮頸細胞學檢查，通過顯示核染色質細節幫助篩查宮頸上皮內瘤變及早期宮頸。脾病理切片

該染色法的診斷價值主要體現在對組織纖維化的評估上：在肝硬化標本中，可清晰顯示門靜脈區增生的藍色膠原纖維包繞紅色肝細胞團；在肺纖維化組織，能明確區分肺泡間隔內異常沉積的藍色膠原纖維與正常肺間質結構；在心肌梗死后修復過程中，可準確識別紅色存活心肌與藍色瘢痕組織的界限。此外，Masson染色還能幫助鑒別**間質反應程度，如浸潤性乳腺*中可見*細胞巢被藍色膠原纖維包繞，而平滑肌肉瘤則表現為彌漫的紅色肌源性分化區域。現代數字化病理分析系統常基于Masson染色結果進行膠原面積定量，為纖維化疾病的療效評估提供客觀指標。該技術因其穩定的染色效果和明確的組織對比度，至今仍是結締組織病理診斷的基石性方法。脾病理切片鐵染色（普魯士藍反應）可檢測組織內鐵沉積，為血色病或慢性溶血性貧血提供病理學證據。

蘇木精染色的時間會直接影響細胞核的顯色效果。如果染色時間不足，細胞核可能會呈現灰藍色，導致核結構模糊；如果染色時間過長，細胞核會過度吸收染料，呈現深紫色，甚至會掩蓋核內細節。在實際操作中，需根據組織類型和切片厚度調整染色時間，通常為5-15分鐘。染色后需用1%鹽酸乙醇分化，去除多余染料，再通過溫水或自來水沖洗返藍，使細胞核呈現清晰的藍紫色。分化時間需在顯微鏡下控制，以細胞核染色清楚而細胞質基本無色為佳。

LFB染色（Luxol fast blue染色）是神經病理學中特異性顯示髓鞘結構的經典染色技術，其原理基于LFB染料的陽離子特性與髓鞘中酸性脂蛋白的靜電結合。標準染色流程需嚴格控制條件：石蠟切片脫蠟至水后，浸入0.1%LFB染液（60℃預熱）中孵育8-16小時（過夜染色效果比較好），隨后用95%乙醇洗去多余染料；關鍵分化步驟采用0.05%鋰碳酸溶液處理30-90秒，在顯微鏡監控下至白質呈現亮藍色而灰質近乎無色，***用焦油紫或中性紅復染神經元胞體。.革蘭染色在細菌性**理診斷中不可或缺，能快速區分革蘭陽性菌與陰性菌，為臨床抗****提供方向。

該染色在神經退行性疾病診斷中具有獨特價值：多發性硬化癥：可清晰顯示斑塊狀髓鞘脫失區域（藍色染色缺失）與正常白質的鮮明對比脊髓損傷：能區分沃勒變性（軸突遠端髓鞘崩解）與正常神經纖維腦白質營養不良：可觀察到彌漫性髓鞘形成缺陷技術要點需特別注意：分化液濃度過高（>0.1%）會導致髓鞘染色完全脫失復染時間需控制在2分鐘內，避免掩蓋髓鞘結構染色效果與組織固定時間直接相關，過度固定的腦組織需延長染色時間20%現代神經病理學常將LFB染色與PAS、Bielschowsky銀染組成"髓鞘-軸突-膠質"三聯染色，為脫髓鞘疾病提供***診斷依據。質量控制需設立正常白質對照，確保染色批次間的穩定性。抗酸染色如Ziehl-Neelsen法用于結核桿菌檢測，其紅色桿菌與藍色背景形成鮮明對比便于觀察。脾病理切片

熒光原位雜交（FISH）技術能定位染色體異常，為乳腺*HER2擴增或淋巴*MYC重排提供分子證據。脾病理切片

封片是HE染色流程中至關重要的收尾步驟，其操作質量直接關系到切片的長期保存性和顯微鏡觀察效果。在封片過程中，封片膠的選擇尤為關鍵，中性樹脂（如加拿大樹膠或合成樹脂）因其pH穩定、折射率（約1.52）與玻璃相近，能比較大限度保持染色穩定性，避免因酸性或堿性環境導致染料褪色。實際操作中，封片膠的濃度需嚴格把控：理想狀態應為滴落時呈絲狀流淌，若濃度過高（表現為膠體拉絲過長）會導致封片膠分布不均，甚至產生皺褶；濃度過低則無法形成有效粘附，長期保存可能出現蓋玻片脫落現象。脾病理切片